Цены ветеринарной клиники Амиго в Ростове-на-Дону

Название услуги	Цена
Прием
Первичный терапевтический прием	450
Повторный терапевтический прием	350
Манипуляционный прием	200
Специальный клинический осмотр
Первичный дерматологический прием	700
Повторный дерматологический прием	500
Первичный неврологический прием	700
Повторный неврологический прием	500
Первичный ортопедический прием	700
Повторный ортопедический прием	500
Первичный онкологический прием	700
Повторный онкологический прием	500
Вакцинация
Вакцинация Вангард 7- L	1000
Вакцинация Вангард 7- L + Рабизин	1250
Вакцинация Мультифел-4	800
Вакцинация Нобивак Мухо RHD	1000
Вакцинация Нобивак DHPPI	1000
Вакцинация Нобивак DHPPI + L	1000
Вакцинация Нобивак DHPPI + LR	1300
Вакцинация Нобивак DHPPI + L + R	1300
Вакцинация Нобивак DHPPI + KC	1850
Вакцинация Нобивак KC	1350
Вакцинация Нобивак KC + RL	1800
Вакцинация Нобивак RL	650
Вакцинация Нобивак Tricat Trio	1050
Вакцинация Нобивак Tricat Trio + R	1300
Вакцинация Нобивак Ducat	1000
Вакцинация Нобивак Ducat +R	1200
Вакцинация Нобивак R	650
Вакцинация Рабизин	750
Вакцинация Пуревакс RCP	1160
Вакцинация Пуревакс RCP+Рабизин	1460
Вакцинация Пуревакс RCPCH	1300
Вакцинация Пуревакс RCPCh + Рабизин	1550
Вакцинация Пуревакс FELV	1400
Вакцинация Эурикан DHPPI + L	1100
Вакцинация Эурикан DHPPI + LR	1200
Вакцинация Эурикан DHPPI + L + Рабизин	1400
Диагностические исследования
Внеплановый вызов специалиста УЗД	500
Организация проведения МРТ с выдачей описания и заключения	2000
Отоскопия	300
Повторное УЗИ	350
Преданестезиологическое обследование	2415
Тест Ортолани	650
Тест с флуоресцином	350
Тонометрия	100
УЗИ (1-н орган)	500
УЗИ (одной системы органов)	650
УЗИ (органов брюшной полости)	1100
УЗИ беременности детализированное	650
УЗИ глаз	550
УЗИ для выявления наличия беременности (без описания)	500
УЗИ надпочечников	650
УЗИ сердца кошке на наличие признаков ГКМП	550
УЗИ скрининговое брюшной полости	600
УЗИ скрининговое грудной полости (без ЭхоКГ)	600
УЗИ TFAST + AFAST	1000
Экспресс-тест для диагностики панлейкопении у кошек (CPV+CCV)	774
Экспресс-тест для диагностики Парвовируса и Коронавируса у собак (CPV+CCV)	774
ЭхоКГ собаке на наличие признаков кардиогенного отека легких	600
Клинические манипуляции
1 — категорию сложности определяет врач.
Анестезия общая до 10 кг	1600
Анестезия общая 10-30 кг	2500
Анестезия общая 30-50 кг	3500
Анестезия общая более 50 кг	4500
Видеоскопия	400
Вскрытие эпидермоидной кисты	100
Забор крови для исследования	250
Забор крови с постановкой периферического катетера	350
Забор материала для исследования (шерсть, соскоб, мазок, смыв)	150
Забор материала для цитологического исследования	350
Зондирование желудка	от 350
Измерение уровня глюкозы	130
Лапароцентез	170
Использование расходных материалов в ходе лечения 1 категория	от 5
Использование расходных материалов в ходе лечения 2 категория	от 17
Катетеризация уретры собаки	от 300
Катетеризация уретры кошки	от 300
Наложение повязки	от 32
Обработка инсектоакарицидами	50
Обработка ран	от 25
Обрезание когтей	200
Обрезание когтей кошке	150
Обрезание когтей собаке	180
Первичная санация гнойных ран/полостей	600
Пероральная дача препарата	100
Подрезание клюва	300
Подрезание резцов грызунам	400
Постановка периферического катетера	250
Постановка назогастрального зонда	1000
Постановка эзофагастомы	1000
Ректальное введение препарата	100
Родовспоможение 1-й час	700
Родовспоможение 2-й и последующие часы(1 час)	300
Санация параанальных желез	300
Санация ушей	185
Седация до 10 кг	650
Седация 10-30 кг	1100
Седация 30-50 кг	1500
Седация более 50 кг	2000
Снятие периферического катетера	70
Снятие швов	250
Перикардиоцентез и эвакуация жидкости до 50 мл	1500
Торакоцентез до 150 мл	650
Торакоцентез до более 150 мл	850
Торакоцентез диагностический	500
Цистоцентез	150
Эвакуация жидкости из полости до 1 л	500
Эвакуация жидкости из полости второго и каждого следующего литра	200
Биопсия наружных образований	от 2000
Core — биопсия наружных образований	от 2000
Биопсия под УЗ контролем	от 800
Инцизионная биопсия	от 2300
Инцизионная/эксцизионная биопсия	от 2500
Панч-биопсия	от 952
Трепан-биопсия	от 4300
Лечебные манипуляции
1 — категорию сложности определяет врач.
Инсулин введение	от 229
Адреналин введение	от 191
Ализин введение	от 620
Анальгин введение	от 180
Атропин введение	от 180
Байтрил введение	от 180
Ветмедин введение	от 3425
Винбластин введение	от 512
ГКС введение	от 190
Дерзопт применение	от 998
Димедрол введение	от 185
Добутамин введение	от 845
Инфузионная терапия	от 295
Кальций хлористый введение	от 180
Квамател введение	от 276
Кеналог введение	от 328
Кеппра введение	от 820
Ковинан введение	от 294
Маннит введение	от 280
Массаж мочевого пузыря	100
Метоклопрамид введение	от 179
Метронидазол введение	от 207
Микролакс введение	от 220
Натрия хлорид введение	от 171
НПВС введение	от 191
Папаверин введение	от 180
Пропофол введение	от 245
Гемотрансфузия	1300
Ондансетрон введение	от 218
Патогенетическое лечение трансмиссивных заболеваний	от 204
Пиридоксин введение	от 180
Прозерин введение	от 182
Регионарная анальгезия	от 175
Ректальное введение лекарственного средства	100
Санация мочевого пузыря	350
Серения введение	от 325
Синулокс введение	от 205
Стагемин введение	от 210
Стимуляция родовой деятельности	от 180
Снятие клещей 1-3 шт	150
Снятие клещей 3-10 шт	200
Снятие клещей более 10 шт	300
Суперлорин введение	от 6 959
Теваграстим введение	от 2 292
Тилозин введение	от 180
Цефтриаксон введение	от 202
Цианокобаламин введение	от 180
Энроксил введение	от 180
Этамзилат введение	от 188
Эуфиллин введение	от 180
Глюкоза введение	от 180
Дротаверин введение	от 180
Платифиллин введение	от 180
Кетоконазол пероральная дача препарата	от 126
Клиндамицин введение	от 263
Линковик введение	от 180
Панангин введение	от 195
Фуросемид введение	от 180
Анальгезия	от 223
Забор ликвора	от 1182
Обработка антисептическим спреем	100
Оксигенотерапия (1 час)	400
Оксигенотерапия (16 час)	3000
Промывание носослезного канала	от 360
Пункционная черезкожная аспирация серомы	300
Реанимационные мероприятия 1 категория1	400
Реанимационные мероприятия 2 категория1	800
Химиотерапия болюсная	830
Химиотерапия инфузионная	2180
Химиотерапия внутриплевральная	1500
Химиотерапия внутрипузырная	1000
Комплексная санация зубов и полировка до 10 кг (с учетом препаратов, расходных материалов и анестезии)	3500
Комплексная санация зубов и полировка 10-30 кг (с учетом препаратов, расходных материалов и анестезии)	4500
Комплексная санация зубов и полировка более 30 кг (с учетом препаратов, расходных материалов и анестезии)	5100
Санация зубов УЗ скалером	1100
ОРиИТ
Послеоперационное пребывание в ОРиИТ 6-12 ч	0
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 1 категория	325
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 1 категория (з)	400
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 2 категория	400
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 2 категория (з)	475
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 3 категория	475
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 3 категория (з)	550
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 4 категория	1150
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 4 категория (з)	1250
Пребывание животного более 10 кг в ОРиИТ 12 ч 5 категория (з)	2000
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 1 категория	275
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 1 категория (з)	350
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 2 категория	350
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 2 категория (з)	425
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 3 категория	425
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 3 категория (з)	500
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 4 категория	1000
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 4 категория (з)	1150
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 5 категория	1500
Пребывание животного менее 10 кг в ОРиИТ 12 ч 5 категория (з)	1750
Кастрация и ОГЭ, клинически здоровые животные (с учетом препаратов и расходных материалов)
Кастрация кобеля до 10 кг	2500
Кастрация кобеля 10-30 кг	3500
Кастрация кобеля более 30 кг	5000
Кастрация кота	2000
Кастрация кота (без учета препаратов, расходных материалов и анестезии)	500
Кастрация хорька	2000
Овариогистерэктомия кошка	3000
Овариогистерэктомия собака до 10 кг	3500
Овариогистерэктомия собака 10-30 кг	4000
Овариогистерэктомия собака 30-50 кг	5000
Овариогистерэктомия собака более 50 кг	6500
Овариогистерэктомия хорек	3500
Овариогистерэктомия енот	3500
Хирургия
Стоимость указана без учета использования расходных материалов, анестезии, ОРиИТ и сопутствующих клинических манипуляций
Ампутация конечности до 10 кг	5000
Ампутация конечности 10-30 кг	5500
Ампутация конечности более 30 кг	6000
Артродез до 10 кг	5000
Артродез 10-25 кг	6000
Артродез более 25 кг	7000
Абдоминальная хирургия 1 категория1	5000
Абдоминальная хирургия 2 категория1	6000
Абдоминальная хирургия 3 категория1	7000
Адреналэктомия более 15 кг	6500
Адреналэктомия до 15 кг	6500
Вправление влагалища	2000
Вправление прямой кишки	1500
Колонопексия	2000
Вправление вывиха ТБС с фиксацией до 10 кг	5000
Вправление вывиха ТБС с фиксацией 10-25 кг	6000
Вправление вывиха ТБС с фиксацией более 25 кг	7000
Вскрытие полости	300
Гастротомия	5000
Гастротомия и гастропексия при завороте желудка (с учетом препаратов, расходных материалов и анестезии)	16780
Гастротомия, гастропексия и спленэктомия при завороте желудка (с учетом препаратов, расходных материалов и анестезии)	18430
Гемимандибулоэктомия	6000
Герниопластика пупочной грыжи неущемленной	1500
Герниопластика пупочной грыжи ущемленной	3000
Извлечение инородного тела из области конъюнктивы	500
Извлечение инородного тела из пищевода	1000
Извлечение инородного тела из носа 1 категория1	300
Извлечение инородного тела из носа 2 категория1	800
Извлечение инородного тела из прямой кишки 1 категория1	500
Извлечение инородного тела из прямой кишки 2 категория1	1000
Извлечение инородного тела из уха	800
Инородное тело в ЖКТ хирургическое лечение	5000
Каудотомия до 10 дней	150
Каудотомия	3000
Кастрация крипторха до 10 кг 1 категория1	1000
Кастрация крипторха до 10 кг 2 категория1	2000
Кастрация крипторха до 10 кг 3 категория1	3000
Кастрация крипторха до 10 кг 4 категория1	3500
Кастрация крипторха 10-25 кг 1 категория1	1500
Кастрация крипторха 10-25 кг 2 категория1	2500
Кастрация крипторха 10-25 кг 3 категория1	3500
Кастрация крипторха 10-25 кг 4 категория1	4000
Кастрация крипторха более 25 кг 1 категория1	2000
Кастрация крипторха более 25 кг 2 категория1	3000
Кастрация крипторха более 25 кг 3 категория1	3500
Кастрация крипторха более 25 кг 4 категория1	4500
Кесарево сечение кошки	5500
Кесарево сечение собаки до 10 кг	5500
Кесарево сечение собаки 10-30 кг	6000
Кесарево сечение собаки более 30 кг	7000
Кожная пластика поворотным лоскутом	4000
Колэктомия до 10 кг	5000
Колэктомия 10-25 кг	6000
Колэктомия более 25 кг	7000
Краевая резекция печени	5000
Резекция доли печени	6500
Резекция 2-х и более долей печени	7500
Резекция опухоли прямой кишки	5000
Клиновидная кантопластика	2000
Купирование ушей до 10 кг (с учетом препаратов и расходных материалов)	4500
Купирование ушей более 10 кг (с учетом препаратов и расходных материалов)	5500
Лапаротомия диагностическая до 30 кг	2000
Лапаротомия диагностическая от 30 кг	3000
Лимфаденэктомия	2000
Лобэктомия	6000
Нефрэктомия	6000
Овариогистерэктомия (по показаниям) кошки	6000
Овариогистерэктомия (по показаниям) собаки до 10 кг	6000
Овариогистерэктомия (по показаниям) собаки 10-30 кг	7000
Овариогистерэктомия (по показаниям) собаки 30-50 кг	8000
Овариогистерэктомия (по показаниям) собаки более 50 кг	9800
Онхиэктомия 1 палец	300
Онхиэктомия 4 лапы	5000
Отогематома хирургическое лечение более 15 кг	2500
Отогематома хирургическое лечение до 15 кг	2000
Отрыв ПКС (одна сторона) до 10 кг	5000
Отрыв ПКС (одна сторона) 10-25 кг	6000
Отрыв ПКС (одна сторона) более 25 кг	7000
Оперативное лечение при фимозе/парафимозе	3000
Блефаропластика 1 категория	2000
Блефаропластика 2 категория	3000
Пиелотомия	7000
Пластика дефекта тканей на питающей коже	4000
Пластика носового зеркала	2000
Пластика диафрагмальной грыжи	5000
Пластика паховой грыжи до 10 кг	3000
Пластика паховой грыжи 10-25 кг	4000
Пластика паховой грыжи более 25 кг	5000
Пластика травматической грыжи	5000
Пролапс слезной железы 3-го века вправление	400
Пролапс слезной железы 3-го века хирургическое лечение	3000
Проптоз глазного яблока 1 кат хирургическое лечение	2000
Проптоз глазного яблока 2 кат хирургическое лечение	3000
Проптоз глазного яблока 3 кат хирургическое лечение	4000
Пункция 1 категория1	200
Пункция 2 категория1	500
Регионарная мастэктомия кошки	3000
Регионарная мастэктомия собаки до 10 кг	3000
Регионарная мастэктомия собаки 10-25 кг	4000
Регионарная мастэктомия собаки более 25 кг	5000
Резекция головки бедренной кости до 10 кг 1 конечность	5000
Резекция головки бедренной кости до 10 кг 2 конечность	7000
Резекция головки бедренной кости 10-25 кг 1 конечность	6000
Резекция головки бедренной кости 10-25 кг 2 конечность	9000
Резекция головки бедренной кости более 25 кг 1 конечность	7000
Резекция участка кости	3000
Сегментарная цистоэктомия	6000
Сегментарная резекция челюсти	5000
Сегментарная резекция ребер	5000
Сегментарная панкреотомия	5000
Сегментарная гастроэктомия	6000
Сегментарная энтероэктомия с формированием анастомоза	6000
Сиаладенэктомия	4000
Спленэктомия до 10 кг	5000
Спленэктомия 10-25 кг	6000
Спленэктомия более 25 кг	7000
Скротуморхифенитулоэктомия	6000
Субтотальная мастэктомия	6000
Транспозиция мочеточника	6000
Тотальная резекция НСП	5000
Тотальная мастектомия	7000
Экстракция временного зуба	500
Экстракция зуба 1 категория	500
Экстракция зуба 2 категория	700
Экстракция более 12 зубов кошек и мелких собак	6000
Удаление прибылых пальцев до 10 дней	300
Ампутация пальца	1000
Ампутация пальца с регионарной лимфаденэктомией	3000
Ампутация полового члена собаки	6000
Удаление образования кожи диаметром менее 1 см	500
Удаление образования кожи диаметром менее 3 см без пластики	1000
Удаление образования кожи диаметром более 3 см без пластики	1500
Удаление образования кожи диаметром до 3 см с кожной пластикой 1 категория1	3000
Удаление образования кожи диаметром до 3 см с кожной пластикой 2 категория1	5000
Удаление опухоли мягких тканей диаметром до 5 см	3000
Удаление опухоли мягких тканей диаметром более 5 см	5000
Удаление опухоли мягких тканей диаметром более 5 см с пластикой кожи	6000
Удаление металлоконструкции после остеосинтеза 1 категория1	800
Удаление металлоконструкции после остеосинтеза 2 категория1	1500
Удаление металлоконструкции после остеосинтеза 3 категория1	2000
Удаление анальных синусов	4000
Унилатеральная мастэктомия до 10 кг	5000
Унилатеральная мастэктомия 10-25 кг	5500
Унилатеральная мастэктомия более 25 кг	6000
Уретростомия	5000
Ушивание твердого неба	3000
Уретротомия	4000
Хирургическое лечение брахицефалического синдрома (с учетом препаратов, расходных материалов и анестезии)	8000
Хирургическое лечение промежностной грыжи	4000
Хирургическое лечение артезии ануса	5000
Хирургическое лечение проптоза глазного яблока 1 категория1	3500
Хирургическое лечение проптоза глазного яблока 2 категория1	4000
Хирургическое лечение проптоза глазного яблока 3 категория1	5000
Хирургическое лечение язвы роговицы	3000
Холецистоэктомия	6000
Холецистодуоденостомия	7000
Цистотомия	5000
Электроэксцизия образования слизистой оболочки ротовой полости 1 категория	1500
Электроэксцизия образования слизистой оболочки ротовой полости 2 категория	3000
Эпизиотомия с экстракцией стенки влагалища	5000
Энтеротомия	3500
Энуклеация глазного яблока	3000
Остеосинтез при переломах
Стоимость указана с учетом использования расходных материалов в ходе хирургического лечения, без учета металлоконструкций, анестезии и сопутствующих клинических манипуляций.
Остеосинтез: перелом простой до 10 кг	5000
Остеосинтез: перелом простой 10-25 кг	6500
Остеосинтез: перелом простой более 25 кг	7000
Остеосинтез: перелом сложный, оскольчатый, открытый, застарелый, внутрисуставной до 10 кг	6000
Остеосинтез: перелом сложный, оскольчатый, открытый, застарелый, внутрисуставной 10-25 кг	7000
Остеосинтез: перелом сложный, оскольчатый, открытый, застарелый, внутрисуставной более 25 кг	8000
Лечение и профилактика дисплазии
Профилактика дисплазии тазобедренного сустава. Ювенильный симфизиодез до 10 кг	3000
Профилактика дисплазии тазобедренного сустава. Ювенильный симфизиодез 10-25 кг	4000
Профилактика дисплазии тазобедренного сустава. Ювенильный симфизиодез более 25 кг	5000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Остеотомия локтевой кости до 10 кг	5000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Остеотомия локтевой кости 10-25 кг	6000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Остеотомия локтевой кости более 25 кг	7000
Лечение дисплазии тазобедренного сустава. Двойная остеотомия таза	8000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Удаление крючковидного отростка локтевой кости до 10 кг	5000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Удаление крючковидного отростка локтевой кости 10-25 кг	6000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Удаление крючковидного отростка локтевой кости более 25 кг	7000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Фиксация крючковидного отростка локтевой кости до 10 кг	5000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Фиксация крючковидного отростка локтевой кости 10-25 кг	6000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Фиксация крючковидного отростка локтевой кости более 25 кг	7000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Удаление венечного отростка до 10 кг	5000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Удаление венечного отростка 10-25 кг	6000
Лечение дисплазии локтевого сустава. Удаление венечного отростка более 25 кг	7000
Металл для остеосинтеза
Винт кортикальный 2 мм 1 шт	200
Винт кортикальный 2,4 мм 1 шт	220
Винт кортикальный 2,7 мм 1 шт	250
Винт кортикальный 3,5 мм 1 шт	300
Пластина DCP S-образная	1800
Пластина DCP оскольчатая	1500
Пластина DCP прямая	1900
Пластина DCP Т-образная	2200
Пластина реконструктивная	1000
Лабораторные исследования
Гематологическое исследование (анализатор)	450
Исследование мазка из уха на отодектоз/демодекоз	350
Исследование соскоба кожи на эктопаразитов	350
Исследование на дерматомикозы	350
Микроскопия нативного мазка крови на наличие микрофилярий	100
Микроскопия мазка крови	300
Ретикулоциты (ручной подсчет)	700
Микроскопия осадка мочи	200
Общий анализ мочи (анализатор + микроскопия)	395
Общий анализ мочи (анализатор)	200
Перекрестный тест на агглютинацию	350
Трихограмма	400
Цитологическое исследование	500
Груминг: Гигиенические мероприятия
Экспресс-линька животного до 10 кг 1 категория1	1100
Экспресс-линька животного до 10 кг 2 категория1	1300
Экспресс-линька животного 10-20 кг 1 категория1	1300
Экспресс-линька животного 10-20 кг 2 категория1	1500
Экспресс-линька животного 20-40 кг 1 категория1	1500
Экспресс-линька животного 20-40 кг 2 категория1	2000
Экспресс-линька животного более 40 кг 1 категория1	2000
Экспресс-линька животного более 40 кг 2 категория1	3000
Гигиена — купание, высушивание феном, стрижка когтей, очищение лосьоном ушей и слезных дорожек.
Гигиена кошки	650
Гигиена собак менее 10 кг 1 категория1	660
Гигиена собак менее 10 кг 2 категория1	990
Гигиена собак 10-20 кг 1 категория1	880
Гигиена собак 10-20 кг 2 категория1	1540
Гигиена собак 20-40 кг 1 категория1	1210
Гигиена собак 20-40 кг 2 категория1	1980
Гигиена собак более 40 кг 1 категория1	1540
Гигиена собак более 40 кг 2 категория1	2620
Гигиеническая стрижка — стрижка машинкой с лезвием 3мм. Наличие колтунов и\или загрязненная шерсть — +1 категория; гигиена — +1 категория. Для кошек: стоимость седации, при необходимости, входит в стоимость.
Гигиеническая стрижка собак до 10 кг 1 категория1	1300
Гигиеническая стрижка собак до 10 кг 2 категория1	1600
Гигиеническая стрижка собак до 10 кг 3 категория1	2000
Гигиеническая стрижка собак 10-20 кг 1 категория1	1500
Гигиеническая стрижка собак 10-20 кг 2 категория1	1800
Гигиеническая стрижка собак 10-20 кг 3 категория1	2200
Гигиеническая стрижка собак 20-40 кг 1 категория1	2000
Гигиеническая стрижка собак 20-40 кг 2 категория1	3000
Гигиеническая стрижка собак 20-40 кг 3 категория1	4000
Гигиеническая стрижка собак более 40 кг 1 категория1	3000
Гигиеническая стрижка собак более 40 кг 2 категория1	4000
Гигиеническая стрижка собак более 40 кг 3 категория1	5000
Установка силиконовых наконечников на когти кошке	от 318
-Установка силиконовых наконечников на когти кошке (единица)	300
-Коготки колпачки защитные красные 20 шт (шт)	346
-Коготки колпачки защитные оранжевые 20 шт (шт)	346
-Коготки колпачки защитные прозрачные 20 шт (шт)	400
-Коготки колпачки защитные синие 20 шт (шт)	318
-Коготки колпачки защитные сиреневые 20 шт (шт)	346
Гигиеническая стрижка кошки 1 категория1	1300
Гигиеническая стрижка кошки 2 категория1	1600
Гигиеническая стрижка кошки 3 категория1	2000
Эвтаназия по медицинским показаниям
Эвтаназия	от 1000
-Эвтаназия животного до 1-го кг	1000
-Эвтаназия животного до 10 кг	1700
-Эвтаназия животного 10-20 кг	2500
-Эвтаназия животного 20-30 кг	3500
-Эвтаназия животного 30-40 кг	4500
-Эвтаназия животного более 40 кг	5500
Кремация
Кремация животного (общая) до 500 г	800
Кремация животного (общая) до 5 кг	1500
Кремация животного (общая) до 15 кг	3000
Кремация животного (общая) до 30 кг	3500
Кремация животного (общая) более 30 кг	6000
Кремация животного (индивидуальная) до 5 кг	3000
Кремация животного (индивидуальная) до 15 кг	4500
Кремация животного (индивидуальная) до 30 кг	5000
Кремация животного (индивидуальная) более 30 кг	7500
Стоимость препаратов и расходных материалов используемых в условиях ОРиИТ
Адреналин введение	ампула	21
Актрапид введение	мл	59
Ализин введение	мл	450
Амикацин введение	флакон	66
Анальгезия	мл	53
Анальгин введение	мл	10
Антимедин 0,5 мл введение	единица	90
Атропин введение	ампула	10
Байтрил введение	мл	10
Бранолинд наложение повязки	шт	173
Ветмедин введение	флакон	3255
Витамин К введение	ампула	1547
Волювен р-р 500 мл введение	флакон	728
Глюкоза 40% введение	флакон	70
Глюкоза 5% введение	флакон	42
Глюкометрия	единица	60
Дексдомитор 0,5 мл введение	единица	100
Дексаметазон введение	ампула	20
Дорзопт применение	флакон	998
Димедрол введение	ампула	15
Дисоль р-р 200 мл введение	флакон	58
Добутамин введение	флакон	622
Дротаверин введение	ампула	10
Кальций хлористый введение	мл	10
Канинсулин введение	флакон	382
Квамател введение	флакон	121
Кеппра введение	флакон	650
Кетоконазол пероральная дача препарата	таблетка	26
Клиндамицин введение	ампула	93
Линковик введение	мл	10
Маннит введение	флакон	111
Медитин 0,5 мл введение	0,5 мл	90
Мелоксивет введение	мл	21
Мелоксикам введение	ампула	27
Метоклопрамид введение	ампула	7
Метронидазол введение	флакон	32
Микролакс введение	шт	104
Натрия хлорид 100 мл введение	флакон	19
Натрия хлорид 200 мл введение	флакон	54
Натрия хлорид 400 мл введение	флакон	57
Окситоцин введение	мл	1
Ондансетрон введение	ампула	47
Онсиор введение	мл	160
Панангин введение	ампула	25
Папаверин введение	ампула	10
Пиридоксин введение	ампула	10
Платифиллин введение	ампула	10
Преднизалон введение	ампула	25
Прозерин введение	ампула	12
Пропофол введение	ампула	100
Рингер р-р 200 мл введение	флакон	58
Рингер р-р 400 мл введение	флакон	64
Рингер-Локка р-р 100 мл введение	флакон	22
Рингер-Локка р-р 200 мл введение	флакон	37
Рингер-Локка р-р 400 мл введение	флакон	54
Серения введение	0,5 мл	165
Синулокс введение	мл	28
Стерофундин р-р 1 л введение	флакон	218
Стерофундин р-р 500 мл введение	флакон	164
Телозол 0,25 мл введение	единица	85
Тилозин введение	мл	10
Транексам введение	ампула	40
Флексопрофен введение	мл	30
Фуросемид введение	ампула	10
Цефтриаксон введение	флакон	35
Цианокобаламин введение	ампула	10
Энроксил введение	мл	10
Этамзилат введение	ампула	18
Эуфиллин введение	ампула	10
BOM катетер уретральный для кошек 1,3 х 135	шт	207
Genia катетер уретральный со стилетом д/к 1,0*110 мм	шт	213
Kruuse BUSTER катетер уретральный со стилетом д/к 1,0*130 мм	шт	186
Kruuse BUSTER катетер уретральный со стилетом д/к 1,3*130 мм	шт	285
Kruuse катетер стерильный для собак 1,3 мм 4FG	шт	169
Kruuse катетер стерильный для собак 10FG	шт	305
Kruuse катетер стерильный для собак 2 мм 6FG	шт	201
Kruuse катетер стерильный для собак 8FG	шт	278
UROLENE катетер уретральный д/к со стилетом 0,8*130 мм	шт	266
Бинт медицинский (нестерильный 10*16)	шт	50
Бинт медицинский (нестерильный 5*10)	шт	9
Бинт медицинский (стерильный 10*16)	шт	38
Бинт медицинский (стерильный 5*10)	шт	15
Гемасин контейнер для сбора крови	шт	210
Зонд желудочный	шт	50
Игла инъекционная	шт	3
Катетер	шт	24
Катетер Buster 3. 3 мм для собак 10FG	шт	215
Катетер уретральный для больших собак 3.2х600 мм	шт	203
Катетер уретральный для средних собак 2.8х300 мм	шт	152
Катетер уретральный для средних собак 2.8х600 мм	шт	176
Пеленки 40*60	шт	15
Пеленки 60*60	шт	20
Пеленки 90*60	шт	28
Перекись водорода 100 мл	шт	15
Перчатки н/с	пара	33
Салфетки стерильные № 10 (двухслойные 16*14)	шт	16
Салфетки стерильные № 5 (двухслойные 45*29)	шт	40
Система ПР (однораз. с фильтром)	шт	20
Удлинитель магистральный KDM 1,45*2,75 мм	шт	55
Хлоргексидин биглюконат 0,05% 100 мл	флакон	19
Шприц 1 мл, 3 мл, 5мл	шт	6
Шприц 10 мл, 20 мл	шт	15
Шприц 50 мл	шт	40

Симптомы и лечение дерматомикозы у собак и кошек

Наиболее распространенной группой кожных заболеваний, передающихся человеку через домашних животных, в частности собак и кошек, являются дерматомикозы. Это обширная группа поражений кожных покровов, вызываемых патогенными грибами. Из них наиболее часто происходит заражение возбудителями трихофитии и микроспории, называемыми в обиходе стригущим лишаём.

Микроспория — инфекционное заболевание кожи и ее производных, вызываемое грибами рода Microsporon. Основной признак болезни — появление облысевших участков кожи круглой или овальной формы, покрытых корочками и редкими обломанными волосами. Болезнь передается человеку.

Трихофития, или трихофитоз — инфекционная болезнь животных и человека, вызываемая грибами рода Trichophyton, также характеризующаяся появлением на коже участков с обломанными волосами, покрытых корками и чешуйками. Таким образом,клинические признаки в обоих случаях одинаковы.

Трихофитией и микроспорией заражаются животные всех возрастов, но особо чувствителен к заболеванию молодняк с первых дней жизни. Болезнь регистрируется в любое время года. Источником возбудителя являются больные животные. В городской среде основные носители кошки, в особенности бездомные, и мышевидные грызуны.

Возбудитель проникает в глубокие слои кожи и вызывает ее воспаление с образованием микроабсцессов. Воспалительные участки кожи зудят, животные чешутся и тем самым распространяют возбудителя на другие участки тела.

Чаше всего пораженные участки кожи локализуются на голове, ушах и хвосте. В некоторых случаях пятна имеют вытянутую форму и пересекают лицо, губы, подбородок, нос. Иногда стригущий лишай покрывает все тело, при этом кожа шелушится или становится сальной. Выпадение волос может быть средним или сильным. Если грибок поражает когти — может произойти их деформация и неправильный рост.

По степени поражения различают:

• поверхностную,
• глубокую,
• стертую
• и скрытую формы заболевания.

У взрослых животных трихофития и микроспория чаще протекает в скрытой форме, у молодых наблюдают все формы.

Зуд при стригущем лишае может как проявляться, так и отсутствовать. Поверхностная форма характеризуется выпадением и обламыванием волос, образованием безволосых, шелушащихся пятен округлой формы. Признаки воспалительного процесса при поверхностной форме малозаметны.

При глубокой форме воспалительный процесс резко выражен, на поверхности кожи образуются засохшие корки. Мелки пятна могут сливаться, образуя обширные, покрытые корками очаги. Глубокая форма стригущего лишая встречается реже и только в запущенных случаях.

Заражение происходит через поврежденную кожу. Источник возбудителя — больное животное.

Грибки образуют большое количество спор, что способствует их широкому распространению. Споры вместе с чешуйками и корочками попадают во внешнюю среду. Заражение происходит при непосредственном контакте со спорами. Инкубационный период заболевания составляет от 5 до 40 суток.

Факторы передачи трихофитии и микроспории различные предметы ухода, инвентарь, одежда и обувь хозяев, загрязненные шерстью больных животных. Споры могут находиться на любых предметах, бывших в контакте с больным животным — щетках, подстилках, мебели, а так же на выпавшей шерсти. Так как споры могут сохраняться в течение долгого времени, животное может заразиться практически в любом месте, где были другие кошки или собаки.

Споры долго сохраняются во внешней среде: на подстилке, в почве, на деревянных предметах. Прямые солнечные лучи убивают грибы в течение нескольких часов, лучи ртутно-кварцевой лампы — за 30 мин. Во влажной среде при температуре 80 — 90 градусов грибы погибают за 7 — 10 мин. Сухой жар (100 — 110 градусов Цельсия) убивает их за 15 — 20 мин.

Заражение человека чаще всего происходит от больных животных при попадании на его кожу загрязненных возбудителем чешуек кожи волос, шерсти. Естественная восприимчивость людей к дерматомикозам высокая.

В случае заражения от животного продолжительность инкубационного периода 5-7 дней. На коже появляются округлые и овальные, четко очерченные пятна с отрубевидным шелушением. На волосистой части головы возникает очаг, в котором волосы обломаны на высоте 5 — 6 мм, пеньки волос покрыты чехлом из спор гриба. Поражаться также могут брови и ресницы.

Диагноз ставится на основании клинических данных и лабораторных исследований. Некоторых возбудителей дерматомикозов достаточно легко выявляют облучением пораженной кожи ультрафиолетовой лампой Вуда. При этом наблюдается характерное свечение зелёным цветом. Но подобное свечение дают только грибы рода Microsporon, и то, не все, а около 60% типов.

Грибы же рода Trichophyton вообще не светятся. Кроме того, флуоресцировать могут другие микроорганизмы, не имеющие отношения к возбудителям стригущего лишая, а здоровые кошки могут иметь на шерсти споры грибка, но при этом не быть инфицированными. Поэтому отсутствие характерного свечения при обследовании с помощью лампы Вуда ещё не означает отрицательный результат.

Для постановки окончательного диагноза проводится микроскопия соскоба из пораженного участка кожи. Отобранный образец шерсти измельчается ножницами и заливается на 10 15 минут 10% раствором щёлочи, затем помещается на предметное стекло и проводится его исследование на наличие гиф или конидий патогенных грибов.

Микроскопия волос позволяет выявить и идентифицировать возбудителя болезни. При сомнительном диагнозе пораженные волосы без предварительной обработки щёлочью высевают на питательную среду и выделяют чистую культуру гриба, что позволяет провести идентификацию возбудителя и поставить диагноз со 100% точностью.

Лечение назначается ветеринарным врачом.

Самостоятельно ставить диагноз и проводить лечение, опираясь на информацию, полученную из книг и Интернета нельзя, т.к. в этом случае никаких гарантий на выздоровление животного нет, а вот заразиться от больного животного может любой член семьи, в том числе дети.

Лечение дерматомикозов комплексное и состоит из нескольких этапов:

• — внутримышечное введение вакцины против дерматофитозов 2-3 кратно, с интервалом в 10 14 дней;
• — местная обработка пораженных участков кожи противогрибковыми препаратами в течение 3 4 недель, при этом, для пресечения распространения возбудителя по всему телу, рекомендуется выстричь шерсть вокруг пораженных участков;
• — иммунокоррекция (проводится курс лечения иммуномодуляторами).

В более тяжелых случаях в схему лечения включаются оральные противогрибковые препараты. Они обычно назначаются животным с обширными поражениями, длинношерстным животным, а также в случае поражения когтей.

В целом, в случае своевременного обращения к ветеринарным специалистам, заболевшие дерматомикозами животные успешно лечатся. Курс лечения составляет от 3 до 6 недель. Единственное, что требуется от владельцев это терпение и неукоснительное соблюдение всех рекомендаций лечащего врача.

При подозрении на лишай животное необходимо немедленно показать ветеринарному врачу.

В случае подтверждения диагноза владельцам необходимо проводить ежедневную дезинфекцию своей квартиры или иного помещения, в котором содержится больное животное: облучение ртутно-кварцевой лампой, влажная уборка с применением дезинфицирующих средств. Спальное место животного, расчески, щетки по уходу за шерстью и прочие вещи необходимо продезинфицировать.

После каждого контакта человека с больным животным мытье рук с мылом, категорически исключить нахождение животного в спальне владельца, а тем более его присутствие на постели! По возможности исключить контакт животного с детьми.

Своевременное начало комплексного лечения и соблюдение вышеуказанных мер поможет пресечь заражение человека. При появлении характерных поражений кожи владельцев животного им необходимо срочно показаться врачу-дерматологу.

Для профилактики заражения собак и кошек стригущим лишаём необходимо регулярно проводить их вакцинацию. В наших ветеринарных клиниках для этих целей используется целый ряд вакцин против дерматофитозов: Вакдерм, Вакдерм F, Ментавак, Поливак-ТМ и др.

Цены на приём в нашей сети ветклиник

Наименование ветеринарных услуг	Единица измерения	Цена, руб
⭐ Первичный приём	1 животное	400
⭐ Повторный прием	1 животное	200
Первичный прием декоративных, экзотических животных, птиц и рептилий	1 животное	1000
Консультация без животного	—	500
Консультация врача по результатам анализов	1 шт.	400

Все наши Ветклиники:

🏥 Клиника	🗺️ Адрес	🕔
🏥 Алтуфьево	Алтуфьевское шоссе д 56	24/7
🏥 Бабушкинская	Менжинского 29	24/7
🏥 Беляево	Миклухо Маклая, д 18 к1	24/7
🏥 Бутово Северное	Куликовская, 3Д	24/7
🏥 Бутово Южное	Адмирала Лазарева, д. 35	24/7
🏥 Домодедовская	Ясеневая 28	24/7
🏥 Калужская	Воронцовские пруды д. 3	24/7
🏥 Каховская	Болотниковская, 21с8	24/7
🏥 Киевская	Большая Дорогомиловская, 5	24/7
🏥 Люберцы	Люберцы, Октябрьский проспект д.5	24/7
🏥 Марьино	Перервинский Бульвар д. 21/1	24/7
🏥 Медведково	Малыгина 9 стр. 2	24/7
🏥 Митино	Генерала Белобородова, 30	24/7
🏥 Новогиреево	Новогиреевская д 53	24/7
🏥 Первомайская	Нижняя Первомайская улица, 12А	24/7
🏥 Перово	1-я Владимирская, 4	24/7
🏥 Печатники	Гурьянова д. 4 к.1	24/7
🏥 Реутов	Реутов, Калинина, 12	24/7
🏥 Саперный	Саперный проезд д6 к1	24/7
🏥 Солнцево	Главмосстроя дом 7	24/7
🏥 Спортивная	Доватора, д.3	24/7
🏥 Тёплый стан	Теплый Стан 5, к4	24/7
🏥 Хорошево-Мневники	Народного Ополчения 29к1	24/7
🏥 Шипиловская	Мусы Джалиля д 38 к1	24/7
🏥 Щелковская	Алтайская 17А	24/7

Анестезиолог-Реаниматолог / Онколог / Орнитолог / Рентгенолог / Терапевт / Травматолог / УЗИ / Хирург

Цены на ветеринарные услуги – Стоимость лечения собак и кошек

Наименование услуг	Сроки выполнения стандартные*	Цена	Цена Cito +50%
ГЕМАТОЛОГИЯ И ГЕМОПАРАЗИТЫ
ОБЩИЙ АНАЛИЗ КРОВИ БАЗОВЫЙ  (А + автоматическая лейкоформула)	12-24 ч	500	750
ОБЩИЙ АНАЛИЗ КРОВИ СТАНДАРТ (А+Л+СОЭ)	12-24 ч	800	1200
ОБЩИЙ АНАЛИЗ КРОВИ РАСШИРЕННЫЙ (ОКА+RTC+СОЭ)	12-24 ч	900	1350
АВТОМАТИЧЕСКИЙ ПОДСЧЕТ КЛЕТОК (А) без лейкофрмулы	12-24 ч	450	675
СОЭ	12-24 ч	200	300
РЕТИКУЛОЦИТЫ (RTC)	12-24 ч	400	600
ЛЕЙКОФОРМУЛА (Л)	12-24 ч	300	450
БАБЕЗИОЗ 1 (мазок периферической крови)	3-6 ч	500	750
БАБЕЗИОЗ 2 (автомат + мазок крови на бабезиоз из пробирки)	3-6 ч	650	975
КОМПЛЕКС ДИРОФИЛЯРИОЗ (метод Кнотта + ИХ)	До 24 часов	1700	2550
ДИАГНОСТИКА ДИРОФИЛЯРИОЗА (метод Кнотта)	До 24 часов	700	1050
ДИРОФИЛЯРИОЗ ИХА  (Dirofilaria immitis) (Экспресс)	1 час	1300	нет
Цитопаразитарный комплекс (А+микоИФА+хламИФА)	до 5 суток	2000	нет
Совместимость крови	1 час	500	750
БИОХИМИЧЕСКИЕ ПРОФИЛИ
ПЕРВИЧНОЕ ОБСЛЕДОВАНИЕ (8 показателей: Общ. белок, Глюкоза, АСТ., АЛТ, Билирубин общ., Мочевина, Креатинин, Щелочная фосфатаза)	12-24 ч	900	1350
ОПТИМАЛЬНЫЙ МИНИ (13 показателей: Общ.белок, Альбумин, Глобулин, Глюкоза, АСТ., АЛТ, Билирубин общ., Билирубин прямой, Мочевина, Креатинин, Щелочная фосфатаза, Холестерин)	12-24 ч	1300	1950
ОПТИМАЛЬНЫЙ (18 показателей: Общ.белок, Альбумин, Глобулин, Глюкоза, Амилаза, АСТ., АЛТ, Билирубин общ., Билирубин прямой, Мочевина, Креатинин, Щелочная фосфатаза, Холестерин, Ca i, K, Na, Cl)	12-24 ч	1600	2400
МАКСИМАЛЬНЫЙ (25 показателей: Общ.белок, Альбумин, Глобулин, Глюкоза, ЛДГ, Амилаза, АСТ., АЛТ, Билирубин общ., Билирубин прямой, Мочевина, Креатинин, Щелочная фосфатаза, ГГТ, Холестерин, КФК, P, Ca, Ca i, K, Na, Fe, Mg, Cl, триглицериды)	12-24 ч	2700	4050
ПОЧЕЧНЫЙ (13 показателей: Общ. белок, Альбумин, Глобулин, Глюкоза, Мочевина, Креатинин, P, Ca, Ca i, K, Na, Mg, Cl,)	12-24 ч	1100	1650
ПЕЧЕНОЧНЫЙ (13 показателей: Общ.белок, Альбумин, Глобулин, Глюкоза, АСТ., АЛТ, Билирубин общ., Билирубин прямой,Мочевина, Щелочная фосфатаза, ГГТ, Холестерин, Триглицериды)	12-24 ч	1100	1650
ХИРУРГИЧЕСКИЙ (14 показателей: Общ.белок, Альбумин, Глобулин, Глюкоза, АСТ., АЛТ, Билирубин общ., Мочевина, Креатинин, Щелочная фосфатаза, Ca i, K, Na, Cl)	12-24 ч	1300	1950
ПОЖИЛОЕ ЖИВОТНОЕ (13 показателей + Т4: Общ.белок, Альбумин, Глобулин, Глюкоза, АСТ., АЛТ, Билирубин общ., Билирубин прямой, Мочевина, Креатинин, Щелочная фосфатаза, Холестерин)	12-24 ч	2200	нет
ПРЕДОПЕРАЦИОННЫЙ КОМПЛЕКС (Хирургический+А+Коагулограмма)	12-24 ч	2500	3750
СЕРДЕЧНЫЙ (12 показателей: ЛДГ, АСТ. , АЛТ, Мочевина, Креатинин, КФК, Ca, Ca i, K, Na, Mg, Cl)	12-24 ч	1100	1650
Газы и электролиты — 8 показателей ( Na+, K+, Cl-, PH, PCO2, HCO3-, tCO2, Anion gap.)	30 мин	1300	1950
Газы и электролиты 12 показателей ( РО2, SO2, tHb, Na+, K+, Cl-, PH, PCO2, HCO3-, tCO2, Anion gap, base excess)	30 мин	1900	2850
БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ
ИОННЫЙ СОСТАВ (Na+K+Cl+iCa)	12-24 ч	400	600
Выборочные покзатели : моч,креат,об.бил,пр.бил,АСТ,АЛТ,ЩФ,ГГТ, ЛДГ, глюк, об.бел,альб, глоб, холест, Ca,P, Fe, Mg, триглиц	12-24 ч	170	255
Выборочные покзатели : Амилаза , КФК, Липаза, С-реактивный белок	12-24 ч	350	525
ЛИПАЗА ПАНКРЕАТИЧЕСКАЯ (видоспецифическая )	12-24 ч	2300	3450
SDMA	12-24 ч	2250	3375
Фруктозамин	12-24 ч	400	600
IDEXX Аммиак	12-24 ч	600	900
IDEXX Фенобарбитал	12-24 ч	2300	3450
КОАГУЛОГРАММА
Коагулограмма (АЧТВ, протромбиновое время, тромбиновое время, фибриноген)	12-24 ч	1500	2250
ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ КОМПЛЕКСЫ
ДИСПАНСЕРИЗАЦИЯ СОБАК (Оптимальный мини+Автомат+Общий анализ мочи+Комплекс я/г и простейшие+Дирофилляриоз метод Кнотта)	12-24 ч	3000	4500
ДИСПАНСЕРИЗАЦИЯ КОШЕК (Оптимальный мини+Автомат+Общий анализ мочи+Комплекс я/г и простейшие)	12-24 ч	2700	4050
ЭНДОКРИНОЛОГИЯ: ИФА***
Т4 ИФА	до 5 суток	1200	нет
Т3 ИФА	до 5 суток	1200	нет
ТТГ собак ИФА	до 5 суток	1200	нет
тройка Т3+Т4+ТТГ	до 5 суток	3000	нет
Т4 свободный ИФА	до 5 суток	1200	нет
Кортизол	до 5 суток	1200	нет
Лютеинизирующий гормон	до 5 суток	1200	нет
Эстрадиол	до 5 суток	1200	нет
Прогестерон	до 5 суток	1500	нет
Тестостерон	до 5 суток	1200	нет
Малая/Большая дексаметазоновая проба	до 5 суток	2200	нет
ДЕРМАТОЛОГИЯ
Дерматофиты (микроскопия шерсти)	12-24 ч	600	900
Соскоб на эктопаразитов (глубокий соскоб кожи)	12-24 ч	600	900
Дерматологический комплекс (микроскопия шерсти+глубокий соскоб кожи)	12-24 ч	1000	1500
Мазок на отодектоз	12-24 ч	600	900
Мазок-отпечаток с микроскопией окрашенного препарата	12-24 ч	600	900
Микроскопия шерсти + посев на дерматомикозы без антимикотической чувствительности	14-21 дней	1400	нет
Посев на дерматомикозы без антимикотической чувствительности	14-21 дней	900	нет
ЦИТОЛОГ. ИССЛ. ПОРАЖЕННОГО УЧАСТКА (глубокий соскоб)	3-5 дней	1000	нет
МОЧА
Общий анализ мочи, в т.ч. микроскопия осадка	12-24 ч	700	1050
Соотношение белка к креатинину в моче	12-24 ч	350	525
КОМПЛЕКС  (Общий анализ мочи + Соотношение Бел./Креа.)	12-24 ч	900	1350
Нефрокомплекс (ОКА мочи+окраска по Граму)	3-5 дней	1300	нет
Соотношение кортизол к креатинину в моче	3-5 дней	1000	1500
Окраска по Граму	3-5 дней	700	нет
РЕПРОДУКЦИЯ
Определения дня вязки (Прогестерон+Цитология влагалищного мазка)	12-24 ч	2000	3000
КОПРОЛОГИЯ
КОМПЛЕКС Я/Г+ПРОСТЕЙШИЕ (нативный мазок+метод флотации по Фюллеборну)	12-24 ч	700	1050
ОБЩИЙ АНАЛИЗ КАЛА (в т. ч. я/г и простейшие методом нативного мазка)	12-24 ч	1000	1500
ПАТОМОРФОЛОГИЯ
ПУНКТАТ, МАЗОК-ОТПЕЧАТОК, СОСКОБ	3-5 дней	1000	нет
ВЫПОТНАЯ ЖИДКОСТЬ	3-5 дней	1000	нет
СИНОВИАЛЬНАЯ ЖИДКОСТЬ	3-5 дней	1000	нет
ЦИТОЛОГИЯ КРОВИ	3-5 дней	1000	нет
ИССЛЕДОВАНИЕ ТРАНССУДАТОВ И ЭКССУДАТОВ	3-5 дней	1400	нет
ЦИТОЛОГИЯ ВЛАГАЛИЩНОГО МАЗКА (патоморфология)	3-5 дней	1000	нет
ЦИТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ (ЛАБОКЛИН)	до 10 дней	1500	нет
ГИСТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ (ЛАБОКЛИН)	до 10 дней	5500	нет
ГИСТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ (ЛАБОКЛИН РОССИЯ)	до 10 дней	2350	нет
ОКРАСКА по ГРАМУ	3-5 дней	700
ИФА
МИКОПЛАЗМОЗ IgG с ТИТРОМ	до 5 суток	1200	нет
ХЛАМИДИОЗ IgG с ТИТРОМ	до 5 суток	1200	нет
ТОКСОПЛАЗМОЗ IgG с ТИТРОМ	до 5 суток	1200	нет
КОРОНАВИРОЗ IgG с ТИТРОМ	до 5 суток	2000	нет
ЛЕЙКЕМИЯ ИФА с ТИТРОМ	до 5 суток	2000	нет
ИММУНОДЕФИЦИТ ИФА с ТИТРОМ	до 5 суток	2000	нет
Выявление иммунноглобулинов IgG  на парвовирус, чуму и аденовирус (гепатит)  (с Титром) (СОБАКИ)	до 5 суток	2500	нет
КАЛИЦИВИРОЗ, ГЕРПЕС, ПАНЛЕЙКОПЕНИЯ с Титром (КОШКИ)	до 5 суток	2500	нет
ИХА
Собаки
Парвовирусная инфекция плотоядных (Ag)	12-24 ч	1000	нет
Чума собак (Ag)	12-24 ч	1000	нет
Коронавирус собак (Ag)	12-24 ч	1000	нет
Грипп (CIV h4 Ag)	12-24 ч	1200	нет
Аденовироз (CAV Ag)	12-24 ч	1200	нет
Боррелиоз (Ab) — Лайма	12-24 ч	1200	нет
4-Д: Анаплазмоз, Дирофиляриоз, Боррелиоз, Эрлихиоз	12-24 ч	2000	нет
Кошки
Панлейкопения кошек (Ag)	12-24 ч	1000	нет
Коронавирус  кошек (Ag)	12-24 ч	1200	нет
Коронавирус кошек (Ab) — Вирусный перитонит кошек	12-24 ч	1200	нет
Вирусная лейкемия кошек (Ag)	12-24 ч	1000	нет
Вирусный иммунодифицит кошек (Ag)	12-24 ч	1000	нет
Общие
Дирофиляриоз (Ag)	12-24 ч	1200	нет
Лейшманиоз (Ab)	12-24 ч	1200	нет
Эрлихиоз (Ab)	12-24 ч	1200	нет
Лямблиоз (Ag)	12-24 ч	1000	нет
ПЦР Зайцев+
ПЦР-ПРОФИЛИ СОБАКИ
Наименование услуг	Сроки выполнения стандартные*	Цена	Материал
РЕСПИРАТОРНЫЙ (Аденовироз респираторный, Бордетеллез, Герпесвирус собак (CHV), Микоплазмоз spp. , Парагрипп, Пастереллез, Хламидиоз spp., Чума плотоядных). (8)	12-36 часов	3500	Мазок со слизистых
ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫЙ ПРОФИЛЬ (Вирусный гепатит собак (аденовироз), Коронавирусный гастроэнтерит, Лямблиоз, Парвовирусная инфекция, Чума плотоядных). (5)	12-36 часов	2500	Кал/ректальный мазок + кровь с EDTA
РЕПРОДУКТИВНЫЙ (Герпесвирус собак (CHV), Микоплазмоз spp., Уреаплазмоз, Хламидиоз spp.). (4)	12-36 часов	2000	Мазок со слизистых
ГЕМОПАРАЗИТАРНЫЙ (Анаплазмоз, Бабезиоз spp. (пироплазмоз), Боррелиоз, Дирофиляриоз (repens/immitis), Эрлихиоз). (6)	12-36 часов	2700	Кровь с EDTA
БРОДЯГИ (Аденовироз респираторный, Бабезиоз spp. (пироплазмоз), Бордетеллез, Вирусный гепатит собак (аденовироз), Дирофиляриоз (repens/immitis), Коронавирусный гастроэнтерит, Коронавироз респираторный, Лямблиоз, Микроспория+Трихофития, Парагрипп, Парвовирусная инфекция, Токсоплазмоз, Чума плотоядных). (15)	12-36 часов	5000	Мазок со слизистых + кровь с EDTA + шерсть + кал/ректальный мазок
ПИТОМНИКОВЫЙ (Аденовироз респираторный, Вирусный гепатит собак (аденовироз), Герпесвирус собак (CHV), Парагрипп, Парвовирусная инфекция, Чума плотоядных). (6)	12-36 часов	2700	Мазок со слизистых + кровь с EDTA + кал/ректальный мазок
ПЦР-ПРОФИЛИ КОШКИ
РЕСПИРАТОРНЫЙ (Бартонеллез, Герпесвирус кошек (FHV) (ринотрахеит), Калицивироз, Микоплазмоз spp., Пастереллез, Хламидиоз spp. ). (6)	12-36 часов	2700	Мазок со слизистых
ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫЙ ПРОФИЛЬ (Коронавирусный гастроэнтерит, Лямблиоз, Панлейкопения кошек, Токсоплазмоз). (4)	12-36 часов	2000	Кал/ректальный мазок + кровь с EDTA
РЕПРОДУКТИВНЫЙ (Герпесвирус кошек (FHV), Микоплазмоз spp., Токсоплазмоз, Хламидиоз spp.). (4)	12-36 часов	2000	Мазок со слизистых + кровь с EDTA
ГЕМОПАРАЗИТАРНЫЙ (Анаплазмоз, Бабезиоз spp. (пироплазмоз), Гемобартонеллез, Дирофиляриоз (repens/immitis)). (5)	12-36 часов	2500	Кровь с EDTA
ИММУНОДЕФИЦИТНЫЙ (Вирус иммунодефицита кошек (FIV) РНК, Вирус лейкемии кошек (FeLV) РНК, Вирусный перитонит (FIP), Гемобартонеллез, Герпесвирус кошек (FHV) (ринотрахеит), Токсоплазмоз). (6)	12-36 часов	2700	Мазок со слизистых + кровь с EDTA + кал/ректальный мазок
Комплекс FIV (Лейкоцитарная масса (ДНК), Плазма (РНК), Респираторный смыв (РНК)). (3)	12-36 часов	1500	Мазок со слизистых + кровь с EDTA
Комплекс FeLV (Лейкоцитарная масса (ДНК), Плазма (РНК), Респираторный смыв (РНК)). (3)	12-36 часов	1500	Мазок со слизистых + кровь с EDTA
СТОМАТОЛОГИЧЕСКИЙ (Бартонеллез, Вирус иммунодефицита кошек (FIV) РНК, Вирус лейкемии кошек (FeLV) РНК, Калицивироз). (4)	12-36 часов	2000	Мазок со слизистых + кровь с EDTA
ПИТОМНИКОВЫЙ (Вирус иммунодефицита кошек (FIV) ДНК, Вирус лейкемии кошек (FeLV) ДНК, Герпесвирус кошек (FHV) (ринотрахеит), Калицивироз, Коронавирусный гастроэнтерит, Панлейкопения). (6)	12-36 часов	2700	Мазок со слизистых + кровь с EDTA + кал/ректальный мазок
БРОДЯГИ (Бартонеллез, Бордетеллез, Вирус иммунодефицита кошек (FIV) ДНК, Вирус лейкемии кошек (FeLV) ДНК, Гемобартонеллез, Герпесвирус кошек (FHV) (ринотрахеит), Калицивироз, Коронавирусный гастроэнтерит, Лямблиоз, Микроспория+Трихофития, Панлейкопения кошек, Токсоплазмоз). (13)	12-36 часов	4500	Мазок со слизистых + кровь с EDTA + шерсть + кал/ректальный мазок
ПЦР-ПРОФИЛИ ДРУГИЕ
БОЛЕЗНИ ПТИЦ (Герпесвирус птиц (PsHV), Микобактериоз spp., Микоплазмоз spp., Орнитоз, Полиомавироз птиц, Цирковироз птиц (PBFD)). (6)	12-36 часов	2700	перо+помет+кровь с EDTA
ПРОТОЗООНОЗЫ (Амебиаз, Криптоспоридиоз, Лямблиоз, Токсоплазмоз, Трихомоноз). (5)	12-36 часов	2500	Кал/ректальный мазок
ПЦР. ОТДЕЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ
Аденовироз респираторный	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Амебиаз	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок
Анаплазмоз	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Бабезиоз spp. (пироплазмоз)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Бабезиоз (Babesia gibsoni)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Бартонеллез	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Бордетеллез	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Боррелиоз (болезнь Лайма)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Вирусный гепатит кошек (DCH)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Вирус иммунодефицита кошек (FIV) РНК	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Вирус иммунодефицита кошек (FIV) ДНК	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
FIV вирусная нагрузка (РНК)	12-36 часов	1100	Кровь с EDTA
Вирус лейкемии кошек (FeLV) РНК	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Вирус лейкемии кошек (FeLV) ДНК	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
FeLV вирусная нагрузка (РНК)	12-36 часов	1100	Кровь с EDTA
Вирус пенной болезни кошек (FFV) РНК	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Вирус пенной болезни кошек (FFV) ДНК	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Вирусный гепатит собак (аденовироз)	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок/кровь с EDTA
Вирусный перитонит (FIP)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA/асцитная жидкость
FIP вирусная нагрузка (РНК)	12-36 часов	1100	Кровь с EDTA/асцитная жидкость
Гемобартонеллез (гемоплазмоз)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Герпесвирус кошек (FHV) (ринотрахеит)	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Герпесвирус птиц (PsHV)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Герпесвирус собак (CHV)	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Дирофиляриоз (repens/immitis)	12-36 часов	1000	Кровь с EDTA
Калицивироз	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Коронавироз респираторный	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Коронавироз хорьков кишечный	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок
Коронавироз хорьков системный	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
Коронавирусный гастроэнтерит	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок
Криптоспоридиоз	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок
Листериоз	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок
Лямблиоз	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок
Микобактериоз spp.	12-36 часов	600	Помет/кровь с EDTA
Микоплазмоз spp.	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Микроспория+трихофития (ПЦР)	12-36 часов	1000	Шерсть
Неоспороз	12-36 часов	600	Ликвор
Орнитоз	12-36 часов	600	Помет
Панлейкопения кошек	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок/кровь с EDTA
Парагрипп собак	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Парвовироз собак	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок/кровь с EDTA
Пастереллез (P. multocida)	12-36 часов	600
Полиомавироз птиц	12-36 часов	600	Кровь с EDTA/помет
Ротавирусная инфекция	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок/кровь с EDTA
Сальмонеллез	12-36 часов	600	кал/помет
Токсоплазмоз	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок/кровь с EDTA/мазок со слизистых
Трихомоноз	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок
Уреаплазмоз	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Хламидиоз spp.	12-36 часов	600	Мазок со слизистых
Цирковироз птиц (PBFD)	12-36 часов	600	Кровь с EDTA/помет
Чума плотоядных	12-36 часов	600	Кал/ректальный мазок/кровь с EDTA/мазок со слизистых
Эрлихиоз	12-36 часов	600	Кровь с EDTA
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПОЛА ПТИЦ	12-36 часов	1000	Кровь с EDTA/буккальный соскоб
ЭНДОКРИНОЛОГИЯ. (АВТОМАТ)
Т3 свободный	24-48 часов	1000	Сыворотка
Андростендион	24-48 часов	1000	Сыворотка
17-ОНпрогестерон	24-48 часов	1000	Сыворотка
Инсулин собак	24-48 часов	1000	Сыворотка
АКТГ	24-48 часов	1000	Плазма
Проба с АКТГ	24-48 часов	1600	Сыворотка*2
Гиперадренокортицизм хорьков (17-ОН прогестерон, Андростендион, Эстрадиол)	24-48 часов	2400	Сыворотка, кровь с EDTA
БАКТЕРИОЛОГИЯ
Комплексное бактериологическое и микологическое исследование с определением чувствительности к антибиотикам, бактериофагам и антимикотикам	до 21 суток	3000
Дисбактериоз  (с чувствительностью)	до 14 суток	3000
Бакпосев с определением чувствительности к антибиотикам и бактериофагам	до 14 суток	2500
Посев грибов-дерматофитов с определением чувствительности к антимикотикам	до 30 суток	2500

Цены на консультации и помощь в ветеринарной клинике Бемби

ВЕТЕРИНАРНЫЕ УСЛУГИ	СТОИМОСТЬ (руб)
Первичный прием -осмотр животного с постановкой предварительного диагноза и назначением лечения — консультации по уходу и содержанию животных или без жив-го Повторный прием по данной болезни Консультации специалистов повторный осмотр специалистов Диспансеризация животных: Консультация терапевта, УЗИ, ЭХОКГ, б/х+ОАкрови, ОАмочи	650 500 500 (за 30 мин) 1500 1000 5600
Фиксация животного во время осмотра и манипуляций	200/300/500
Вакцинация : Мультикан, Мультифел, Рабифел, Рабиген Мультикан-8, Мультифел + Nobivac Rabies      Nobivac, Eurican, Пуревакс, Вангард (компл. ) Nobivac Rabies Пуревакс  Fel V	800 1200 1500 700 2000
Вакцинация от дерматомикозов, миксоматоза	500
Чипирование животных	1400
Заведение ветеринарного паспорта	100
Инъекции:                            (в/м, п/к)	100
П/к струйно (через систему, бабочку)	200
Переливание растворов (в час,  без учёта расходных материалов)	500
Внутривенные (через иглу, бабочку)	200
Внутрисуставные, внутриполостные	500
Субконъюнктивальные, ретробульбарные	400
Введение противопаразитарных препаратов	400
Взятие крови у собаки, кошки / кролика	200/500
Медикаментозная контрацепция 1 мл (предв. осмотр обязателен)	400
Постановка в/в катетера собаки больше 5 кг	400
Постановка в/в катетера собаки меньше 5 кг, кошки, грызуны	450
Снятие внутривенного катетера	100
Переливание крови	1500
Аутогемотерапия	500
Введение химиотерап-ких препаратов (без учета стоимости препарата)	2500
Новокаиновая блокада
Циркулярная	400
Ганглиев	500
Надплевральная	500
Проводниковая анестезия	1100
Пероральная дача препарата	100
Ректальное введение препарата	100
Обработка шва, глаз, носа	100-500
Санация мочевого пузыря	300
Опорожнение мочевого пузыря с помощью массажа	300
Катетеризация мочевого пузыря: кота /кобеля кошки/суки	1200 / 1000 1500 / 1000
Стрижка шерсти гигиеническая (на модельную запись, прейскурант грумера)	500-1000
Проведение реанимационных мероприятий	1000
Снятие клеща	100
Обработка от эктопаразитов	100
Санация параанальных желез	400
Промывание параанальных желез	600
Промывание полости препуциального мешка	200
Промывание толстого отдела кишечника (клизма)	1000
Промывание желудка	3000
Обрезание когтей у кошек / собак / грызунов	300 / 300 / 400
Санация ушных раковин (за одну, без учета расх. мат-лов)	200
Накладные когти (мягкие лапки)	500
Обработка ран и перевязка: Обработка раны	300-1500
Ушивание раны	1000-3000
Снятие швов	200-400
Обработка поражений кожи	200-1500
Постановка дренажей (за один)	800
Санация дренажей	200-500
Наложение асептической повязки	200-300
Наложение гипсовой и иммобилизирующей повязки	1000-2000
Снятие гипсовой повязки	300-500
Обработка швов	100-500
Лечение пироплазмоза (первичное обращение) — собаки меньше 10 кг — собаки больше 10 кг	4500 5500
Физиотерапия (сеанс)	250
Родовспоможение (без патологии)	600/час
Откачивание  асцитной  жидкости	500/час
Плевроцентез	1000/час
Лапароцентез	800/час
Вагинальные, ректальные  исследования	100
Пункция желудка	2000
Пункция мочевого пузыря	700
Цероброспинальная пункция	1800
Люмбальная пункция	1800
Тест на глюкозу (глюкометр) ( *без стоимости полоски)	300
Отбор проб (взятие анализов)	100-1000
Отбор костного мозга	1000
Оксигенотерапия	500
Мониторинг с нахождением жив-го в кислородной камере	1500 (8ч)
ЭКГ-мониторинг (ЭКГ, измерение давления, измерение сатурации)	1000
ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ:
Осмотр лампой Вуда	300
Видеоскопия	500
Отоскопия	300
Тонометрия	500
Гастроскопия	8000
Гастроскопия с удалением инородного тела	13000
Бронхоскопия Эндоскопическое исследование бронхиального дерева	13000
Колоноскопия  Эндоскопическое исследование прямой и ободочной кишки	8000
Эзофагоскопия Эндоскопическое исследование пищевода	10000
Мерингоскопия  Эндоскопическое исследование среднего уха	10000
Ультразвуковое исследование:
обзорное брюшной полости	1400
повторное узи	900
УЗИ  беременности  / глазного яблока / щитовидной железы	900
Эхокардиография	1400
повторное   ЭХОКГ	900
Рентгеновский снимок (1 проекция)	1100
Запись R-снимка на диск	150
АНЕСТЕЗИЯ:
Общая неингаляционная анестезия: собака  —    до 5 кг/5-10/10-20/20-40/40-60/oт 60 и выше кошка / грызун	2500/3000/4000/4500/5500/6500           2500 / 5000
Ингаляционная анестезия: собака  —    до 5 кг/5-10/10-20/20-40/40-60/oт 60 и выше кошка / грызун	3500/4000/5000/6000/7500/9000           2500 / 5000
Седация для проведения диагностических исследований	2000
Сакрально-эпидуральная анестезия	1100
ХИРУРГИЧЕСКИЕ ВМЕШАТЕЛЬСТВА: (стоимость манипуляций без учета наркоза и расходных материалов)
Удаление папиллом коагулятором  (1 шт. )	500
Вскрытие гематомы или абсцесса	1000
Операции по удалению новообразований	3000-10000
Пластические операции	5000-15000
ТРАВМАТОЛОГИЯ и ОРТОПЕДИЯ:
Остеосинтез: Перелом простой поперечный Перелом сложный (косой, оскольчатый) Перелом внутрисуставной	6000-12000 8000-15000 8000-20000
Артродез сустава (создание полной неподвижности сустава с целью восстановления утраченной при некоторых заболеваниях и повреждениях опороспособности конечности)	21000
Коррегирующая остеотомия при Carpusvalgus (одномоментное хирургическое исправление деформации костей предплечья путем клиновидной остеотомии лучевой кости на вершине угла деформации, косой остеотомии локтевой кости, одномоментного исправления осевой деформации и фиксации отломков кости в аппарате Г. А. Илизарова)	21000
Коррегирующая остеотомия при Genumvalgus: большеберцовой кости (межвертельная остеотомия бедренной кости)	18000
Операции на плечелопаточном суставе:
Стабилизация плечелопаточного сустава при вывихе (устранение вывиха и последующей стабилизации сустава с целью обеспечения благоприятных условий для заживления капсулы сустава)	17000
Экскохлеация расслаивающего остеохондрита (вскрытие полости сустава и удалению дефектов суставного хряща)	14000
Операции на локтевом суставе:
Стабилизация локтевого сустава при вывихе (устранение вывиха и последующей стабилизации сустава с целью обеспечения благоприятных условий для заживления капсулы сустава)	17000
Иссечение гигромы ( удаление образования сухожильного влагалища или серозной сумки)	14000
Иссечение гигромы с пластикой поворотным лоскутом ( удаление образования сухожильного влагалища или серозной сумки с последующим перемещением соседнего участка кожи с целью устранения образовавшегося дефекта)	17000
Удаление изолированного prcoronoideusmedialis (удаление медиального венечного отростка локтевой кости вследствие его неприрощения, травмы и т. д.)	14000
Удаление изолированного pranconeus (удаление локтевого отростка локтевой кости вследствие его неприрощения, травмы и т.д.)	13000
Удаление изолированного pranconeus и prcoronoideusmedialis ( удаление медиального венечного отростка и локтевого отростка локтевой кости вследствие его неприрощения, травмы и т.д.)	18000
Эксхоклеация расслаивающего остеохондрита (вскрытие полости сустава и удалению дефектов суставного хряща)	14000
Операции на тазобедренном суставе:
Резекция головки бедренной кости кошка /собака	12000-17000
Двойная , тройная остеотомия таза (остеотомия костей таза на трех уровнях и ротация остеотомированного сегмента кости с суставной впадиной с целью достижения более адекватного покрытия головки бедренной кости)	28000
Межвертельная остеотомия бедра при ДТБС (одна сторона) (удаление клиновидного участка в межвертельной области бедренной кости с целью получения стабильного сочленения головки бедра в суставной впадине)	26000
Стабилизация ТБС при вывихе	14000-20000
Операции на коленном суставе:
TОТ (тройная остеотомия большеберцовой кости) (вскрытие полости сустава, ревизии коленного сустава, удалению фрагментов ПКС, ревизии менисков (при необходимости — порциальнойменискэктомии медиального мениска) и ушиванию капсулы коленного сустава, удалению клиновидного участка большеберцовой кости с целью увеличения угла между осью диафиза и плато большеберцовой кости, а так же смещения бугристости большеберцовой кости для стабилизации коленного сустава)	30000
Ортопедическая коррекция пателлярного вывиха (вывих коленной чашки) трохлеопластика/ транспозиция бугристости большеберцовой кости мелкие породы собак / средние, крупные породы собак	18000 / 22000
Латеральная периартикулярная стабилизация (вскрытие полости сустава, ревизии коленного сустава, удалению фрагментов ПКС, ревизии менисков (при необходимости — порциальнойменискэктомии медиального мениска) и ушиванию капсулы коленного сустава, установке ортопедической лески вне полости сустава для обеспечения его стабилизации)	20000
Отрыв бугристости большеберцовой кости (стабилизация оторванной бугристости большеберцовой кости при помощи спиц для остеосинтеза, ортопедической провололки)	14000
Пластика капсулы коленного сустава по Брунбергу при разрыве передней крестовидной связки (ПКС) (вскрытие полости сустава, ревизии коленного сустава, удалению фрагментов ПКС, ревизии менисков (при необходимости — порциальнойменискэктомии медиального мениска) и ушиванию капсулы коленного сустава дуплинатурным швом)	16000
Операции на скакательном суставе:
Восстановление медиальной коллатеральной связки скакательного сустава	14000
Эксхоклеация расслаивающего остеохондрита ( вскрытие полости сустава и удалению дефектов суставного хряща)	14000
Удаление (полное) когтей у кошек на передних конечностях (1 конечность)	6000
Консервативное лечение вывихов и переломов Ампутация рудиментарных фаланг (1 шт): — до 5 дней — до 10 дней — от 10 дней до 1 мес	2500-3500                     500   700    800
Ампутация хвостовых позвонков: до 7 дн. /от 7 до 20 дней /от 20 дней до 2-х мес/старше 2-х мес Ампутация хвоста у взрослого животного	350/ 450/ 1000/ 2000   4000
Дезартикуляция фаланги: Кошка / Собака	1500/2000
Ампутация конечностей: Кошка / Собака	7000 / 10000
НЕЙРОХИРУРГИЯ:
Вентрикулоперитонеальное шунтирование при гидроцефалии (установление шунта между желудочками головного мозга и брюшной полостью с целью обеспечения дополнительного оттока ликвора и снижения внутричерепного давления)	20000
Дорсальная ламинэктомия на уровне L VII – S I (удаление дужки 7-го поясничного и 1-го крестцового позвонков с целью устранения компрессии спинного мозга и спинномозговых нервов)	23000
Дорсальная ламинэктомия на уровне L VII – S I со стабилизацией (удаление дужки 7-го поясничного и 1-го крестцового позвонков с целью устранения компрессии спинного мозга и спинномозговых нервов с последующей стабилизацией позвонков при помощи накостных пластин, спиц для остеосинтеза и костного цемента)	28000
Краниотомия при черепно-мозговой травме (гематома): (вскрытие полости черепа с целью удаления гематомы, образовавшейся в результате травмы, и устранения компрессии на головной мозг) кошка / собака	19000 / 22000
Геми / минигемиламинэктомия (удаление грыжи межпозвонкового диска и обеспечению декомпрессии спинного мозга путём удаления вещества межпозвонкового диска)	36000
Удаление опухоли спинного мозга или позвоночного столба (удаление новообразования спинного мозга с иссечением изменённых тканей спинного мозга и позвоночного столба)	36000
Удаление опухоли головного мозга  (вскрытие полости черепа, удалению новообразования головного мозга и замещению образовавшегося костного дефекта окружающими тканями или никелидотитановой сеткой)	35000
Фиксация позвоночного столба при переломе (спондилолистезе) (стабилизация костных отломков позвонков при помощи накостных пластин, спиц для остеосинтеза, ортопедической проволоки, костного цемента)	36000
ЭНДОСКОПИЧЕСКИЕ ОПЕРАЦИИ:
Стентирование при коллапсе трахеи  * стоимость стента не включена	17000
Удаление инородного тела из трахеи и бронхов	15000
ОПЕРАЦИИ НА ГОЛОВЕ:
Закрытие расщепленного неба	3000
Удаление зуба (за один зуб)	300-500
Снятие зубного камня (один зуб)	100
Снятие зубного камня ультразвуком	2500
Хейлопластика	4000
Купирование ушных раковин (оба уха) до 3-х мес/от 3-х до 6-ти месяцев/старше 6-ти месяцев	3000/ 3500/ 4000-6000
Оперативное лечение гематомы ушной раковины(1 ухо) кошка / cобака Консервативное лечение отогематомы	2000 / 2500                     500
Постановка ушных раковин (оба уха) — консервативная — оперативная	1000                    5000
Расширение слухового прохода (удаление новообр-ний) (1 ухо) — кошка — собака	7000 9000
Ринотомия с экскохлеацией опухоли (содержимого): Вскрытие полости носовых ходов с пос-щим удалением новообразования кошка /  собака	18000 / 23000
Сегментарная резекция челюсти: удаление участка челюсти при ноообр-ях данной области кошка /  собака	12000 / 19000
Гемимандибулоэктомия: удаление одной половины нижней челюсти при ноооб-ях данной области кошка /  собака	16000 / 19000
Тонзиэктомия Операция по удалению нёбных миндалин	10000
Сиаладенэктомия (удаление слюнной железы) I категория / II категория / III категория	7000/12000/16000
Закрытие ротоносовой фискулы	8000
Ларингопластика: Вос-е нормального просвета гортани, коррекция дефектов стенки гортани кошка, мелкие собаки / средние, крупные породы собак	14000 / 15000
Вентральная булотомия Вскрытие барабанного пузыря с целью удаления полипа: кошка  / собака	10000-12000
Пластика при брахицефальном синдроме  Расширение ноздрей, резекция мягкого неба	15000
Шея:
Трахеотомия	6000
Трахеостомия (создание искусственного отверстия трахеи)	10000
Ушивание трахеи при разрыве	8000
Гемитиреоидэктомия     (удаление одной доли щитовидной железы)	17000
Операции на грудной полости:
Лигирование баталлова протока Операция по устранению аномалии развития дуги аорты	30000
Диагностическая торакотомия: (вскрытие грудной полости с целью установления или подтверждения диагноза) кошка / собака	15000 / 18000
Герниопластика при диафрагмальной грыже Операция по устранению отверстия, разрыва диафрагмы и попадания органов брюшной полости в грудную	24000
Дренирование грудной полости активным дренажом Постановка дренажа в грудную полость при скоплении в ней жидкости и воздуха	14000
Перикардиоэктомия Операция по иссечению перикарда	26000
Резекция двух и более долей легкого Операция по удалению двух и более долей лёгкого	33000
Резекция доли легкого (лобэктомия) Операция по удалнию одной доли лёгкого	29000
Резекция опухолей ребер с первичной пластикой дефекта Операция по удалению новобразования и поражённого участка рёбер с последующей коррекцией образовавшегося дефекта окружающими тканями	36000
Лигирование грудного лимфатического протока при хилотораксе — 1 категории Операция по ревизии плевральной полости, устранению дефекта лимфатических сосудов, постановка дренажа в грудную полость с целью удаления скопившейся жидкости (1 сторона)	31000
Лигирование грудного лимфатического протока при хилотораксе — 2 категории Операция по ревизии плевральной полости, устранению дефекта лимфатических сосудов, постановка дренажа в грудную полость с целью удаления скопившейся жидкости (2 стороны)	34000
АБДОМИНАЛЬНЫЕ ОПЕРАЦИИ:
Брюшная полость:
Диагностическая лапаротомия (кошка/собака)	4000
Грыжа: Пупочная:                                     Кошка / Собака Паховая (1сторона)                      Кошка / Собака Промежностная (1сторона)         Кошка / Собака	2500 / 3500 4000 / 5000 6000 / 10000
Желудочно-кишечный тракт:
Заворот желудка	12000
Гастротомия  (кошка/собака)	7000/10000
Гастропексия	2000
Портография Лапаротомия, катетеризация брыжеечной вены, введение контрастного вещества, выполнение ряда рентгенографических исследований	10000
Эзофагостома (создание искусственного отверстия пищевода) кошка / собака	8000 / 10000
Эзофаготомия	7000
Энтеротомия   (кошка/собака)	8000/10000
Инвагинация	8000
Колопексия, ректопексия	3000
Хирургическое лечение перитонита	2500
Резекция кишки, наложение анастомоза	13000
Ампутация прямой кишки:           кошка / cобака	6000 / 8000
Наложение кисетного шва	2000
Экстирпация параанальных желез (1 железа)	6000
Атрезия ануса	12000
Резекция опухоли прямой кишки	24000
Печень:
Биопсия печени почек	3000
Холецистэктомия	7000
Селезенка:
Спленэктомия   (кошка/собака)	8000/10000
Мочевая система:
Нефротомия    (кошка/собака)	9000/12000
Ушивание разрыва мочевого пузыря (цистотомия) (удаление конкрементов, новообразований) Кошка / Собака	7000 / 8000
Уретростомия Кошка / Собака	10000 / 12000
Половая система:
Кастрация:  — Кота (с учетом анестезии): кот / кот породы мейн-кун  — Кобеля  до 10 кг. /более 10 кг.  — Хорька, кролика	2000 / 2500 4000 / 5000 3000
Кастрация крипторха: — Кота — Кобеля  (1 сторона/2стороны) — Хорька, кролика	4000 5000 / 7000 4000
Чистка и прижигание фолликул баланопостита	1000
Ампутация полового члена: Кот / Собака	5000 / 8000
Орхифуникулоэктомия при новообразовании неопустившегося семенника (удаление яичка вместе с семенным канатиком)	17000
Оперативное лечение при фимозе, парафимозе (рассечение ущемляющего кольца из крайней плоти или препуциальнго мешка для обеспечения свободного прохождения головки полового члена (требует срочного хирургического лечения)	10000
Дренаж простаты	6000
Стерилизация (без патологии): — Кошки (с учетом анестезии):кошка / кошка породы мейн-кун — Кошки (с уч-м анес-и): косметич. шов(мейн-кун+500) / боковой прокол — Cуки  (плюс cтоимость наркоза (на стр. №3)) : до 5 кг/5-10/10-20/20-40/40-60/oт 60 и выше	3500 / 4000 5000    5000/6000/7000/8000/9000/10000
Стерилизация (без патологии) : — грызуна — хорька	1500 / 2000  5000
Овариогистерэктомия (с патологией, беременная матка): — Кошки — Суки   до 10/10-20/20-40/40-60/oт 60 и выше	5000 7500/8500/9500/10500/12500
Кесарево сечение: — Кошки — Суки  до 10/10-20/20-40/40-60/oт 60 и выше	6000 7000/8000/9000/10000/12000
Эпизиотомия с резекцией пролапса стенки влагалища  (рассечение промежности с целью устранения выпадения влагалища)	10000
Эпизиотомия с экстирпацией влагалища (рассечение промежности с последующим удалением влагалища)	15000
Молочная железа:
Мастэктомия (унилатеральная) — кошки — собаки (мелкие/средние/крупные)	8000 10000/12000/15000
Паллиативное удаление опухоли молочной железы (1 пакет): — кошки — собаки	4000                    5000
Мастэктомия  (регионарная) собаки (мелкие/средние/крупные)	14000/16000/18000
Лимфаденэктомия Операция по удалению лимфатических узлов	11000
Стационарное содержание  (без корма, лечения и препаратов)
Собака Уход за лежачим животным (+ доплата): 0-10 кг/10-20 кг/20-30 кг/30-40 кг/40-50 кг/более 50 кг	550 100/200/300/400/500/600
Кошка Уход за лежачим животным (+ доплата)	450                100
Инфекционный стационар (без лечения и препаратов)	1000

Клинико-эпизоотологические и этиологические особенности дерматомикозов у собак и кошек, совершенствование схем их лечения

На правах рукописи

НИКИТУШКИНА НАДЕЖДА АЛЕКСАНДРОВНА

К ЛИ IШ К О-Э ПИ 3 О ОТО Л О ГИ Ч Е СК И Е И ЭТИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ДЕРМАТОМИКОЗОВ У СОБАК И КОШЕК, СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ СХЕМ ИХ ЛЕЧЕНИЯ

16 00 03 — ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология,

16 00 04 — ветеринарная фармакология с токсикологией

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Новосибирск — 2008

□ОЗ168328

003168328

Работа выполнена в лаборатории мелких домашних животных Всероссийского научно-исследовательского института бруцеллеза и туберкулеза животных Сибирского отделения Россельхозакадемии

Научный руководитель

Научный консультант

кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник Гордиенко Любовь Николаевна

доктор биологических наук, старший научный сотрудник Глотова Татьяна Ивановна

Официальные оппоненты

доктор биологических наук, профессор Колесников Владимир Алексеевич,

кандидат ветеринарных наук Боляхина Светлана Александровна

Ведущая организация

ГНУ Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт Россельхозакадемии

Защита состоится с-о^а^ 2008 г в « /С?л часов на заседании диссертационного совета Д 006 045. 2008 г

Ученый секретарь диссертационного совета

Г.М Стеблева

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность темы. В последние годы заболевания кожи составляют 3070% от общей патологии мелких домашних животных (Н.П Головина, И Б Коло-диев, 1999, ЛН Гордиенко, 2000, ВН Грязин, 2001, НА Максимов, 2001, ЕИ Постников, OB Дмитриев, 2001, ЗС Науменко, 2002, ЕМ Лакеев, 2003, МА Медведева, 2003)

Поражения кожи вызывают эктопаразиты, инфекционные агенты, гипо- и авитаминозы, нарушение обмена веществ (Р Гебауер, 1999, Ю В. Дьяченко, 2001, НА Максимов, 2001, И А Мошкей, 2001, Н Г Решетникова, 2001, Н.В Филиппов, 2001, М С Ощепкова, 2004, А В Шкаренко, 2005)

Одно из ведущих мест в этиологии дерматитов занимают микроскопические грибы, способные длительное время находиться на коже животных, самостоятельно или в ассоциации с другими микроорганизмами вызывать или усугублять воспалительные процессы

Во многих странах мира и различных регионах Российской Федерации установлено широкое распространение дерматомикозов среди мелких домашних животных (L К Georg et al, 1957, W Kaplan et al, 1958, J M Keep, 1959, Г M Громов и соавт, 1982, М Д Шеклаков и соавт, 1978, М Н Веревкина, 2001)

За последние годы разработаны и предложены методы диагностики (В В Ку-расова, 1971; В М Лещенко 1982, В. Л Беспалов, 2003, 2005), лечения и профилактики (К.П Летягин, 1997, Н П Головина, 2000; Е В Зинченко, 2000, Т Б Тугунова, 2004) дерматомикозов животных

Однако некоторые аспекты этих заболеваний у мелких домашних животных до настоящего времени изучены недостаточно

В литературе нет данных об особенностях распространения и клинического проявления дерматомикозов у собак и кошек в различных климатогеографических регионах России

Слабо освещена роль условно патогенных грибов в патогенезе дерматитов у домашних животных (М Г Маноян, 2000, Р С. Овчинников, 2002, Т Б Тугунова, 2004)

Недооценка значения условно патогенной микофлоры в этиологии дерматитов приводит к снижению эффективности проводимых лечебно-профилактических мероприятий

Недостаточно изучены факторы, снижающие терапевтическую эффективность противогрибковых препаратов

Незначительное внимание уделяется изучению применения средств наружной терапии при дерматомикозах собак и кошек

Цель и задачи исследования. Целью исследований являлось выявление и изучение клинико-эпизоотологических и этиологических особенностей проявления дерматомикозов у собак и кошек в условиях г Омска и с их учетом совершенствование схемы терапии

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1 Выявить и изучить клшшко-эпизоотологические особенности проявления дерматомикозов и их роль в нозологической структуре дерматитов у собак и кошек в условиях г Омска

2 Определить этиологическую структуру дерматитов, в том числе дерматомикозов, у собак и кошек в условиях г Омска

3 Изучить влияние водорастворимых витаминов группы В на рост и развитие дерматофитов m vitro и m vivo

4 Разработать эффективную схему применения мази Микосептин при дерма-томикозах собак и кошек.

Научная новизна. В результате эпизоотологического анализа установлено широкое распространение дерматомикозов среди кошек и собак в условиях города Омска, изучены возрастные и породные особенности их проявления Выявлены сезонные различия в проявлении дерматомикозов у собак и кошек.

Установлено, что причиной дермагомикозов мелких домашних животных являются дерматофиты Tr mentagrophytes (22%), М cams (8%) и условно патогенные плесневые и дрожжеподобные грибы (70%)

В условиях in vitro и m vivo установлено ростостимулирующее действие водорастворимых витаминов группы В на патогенные грибы, отрицательное влияние их применения с лечебной целью на сроки выздоровления больных дсрматоми-козами животных

Разработана эффективная схема применения мази Микосептин при дермато-микозах собак и кошек

Практическая значимость работы. Результаты исследований позволяют повысить уровень эффективности лечебных мероприятий при дерматомикозах за счет использования схем лечения больных животных с учетом клинико-эпизоотологических особенностей и предрасполагающих факторов

Результаты исследований явились научным обоснованием для подготовки методических рекомендаций «Эпизоотология, диагностика, профилактика и лечение дерматомикозов мелких домашних животных», утвержденных Ученым советом ГНУ ВНИИБТЖ СО Россельхозакадемии (протокол № 9 от 19 12 2005 г ) и подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» (протокол № 1 от 17 01 2006 г. )

Апробация работы. Материалы исследований доложены на международных ветеринарных конгрессах (Москва, 2001-2006 гг), межрегиональных научно-практических конференциях (Новосибирск, 2001, 2002, 2004, Омск, 2002-2006 гг , Петропавловск, 2003), Сибирском международном конгрессе по вопросам ветеринарной медицины мелких домашних животных (Новосибирск, 2005)

Публикации материалов исследований. По материалам диссертации опубликовано 19 научных статей, в том числе 2 — в журналах, рекомендуемых ВАК

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 124 страницах и состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических предложений, списка используемой литературы, включающего 152 источника, в том числе 51 — иностранный Материалы диссертации иллюстрированы 9 таблицами и 28 рисунками

Основные положения, выносимые на защиту:

1 Результаты выявления и изучения клинико-эпюоотологических особенностей проявления дерматомикозов и их роли в нозологической структуре дермати сок у собак и кошек в условиях г Омска

2 Этиологическая структура дерматитов, в том числе дерматомикозов, у собак и кошек в условиях г Омска

3 Результаты изучения влияния водорастворимых витаминов группы В на рост и развитие дерматофитов in vitro и in vivo

4 Эффективная схема применения мази Микосептин при дерматомикозах собак и кошек.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1. Материалы и методы исследований

Работа выполнена в период с 1997 по 2007 п в лаборатории мелких домашних животных Всероссийского научно-исследовательского института бруцеллеза и туберкулеза животных Сибирского отделения Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИБТЖ СО Россельхозакадемии) на основании договора с Управлением ветеринарии Омской области от 1101 2001 г и тематического плана НИР 2006-2007гг

Для изучения эпизоотической ситуации по дерматитам мелких домашних животных провели анализ и статистическую обработку материалов ветеринарной отчетности (форма 1- вет-А) клиники ГНУ ВНИИБТЖ СО Россельхозакадемии

Всего обследовано 25670 животных, принадлежащих питомникам и частным владельцам г Омска

Исследования проб биоматериала от животных проводили в соответствии с «Методами экспериментальной микологии» (И А Дудка и др., 1982) и «Методическими указаниями по лабораторной диагностике возбудителей дерматомикозов» (В П Королева, 1976, Л Г. Иванова, 1978, Т.И Глотова, 2002)

Для проведения микологических исследований пробы биоматериала измельчали до 2-4 мм в стерильной чашке Петри, соблюдая правила асептики, и высевали на агар Сабуро, в который предварительно добавляли хлортетрациклин для подавления роста посторонней бактериальной микрофлоры Пробу биоматериала засевали на 6 пробирок, три из которых культивировали при 28°С, три — при 37°С семь суток, затем три недели при 28°С Параллельно проводили контрольные посевы проб воздуха бокса методом седиментации

Выросшие колонии грибов идентифицировали, учитывая характер воздушного и субстратного мицелия, морфологию гиф, микро- и макроконидий по методике Rebell and Taphn, 1979, а также с помощью «Определителя патогенных и условно патогенных грибов» (Д Сатгон, А Фотергилл, М. Ринальди, 2001)

Для установления бактериальной обсемененности очагов поражений кожи проводили посев проб биоматериала на мясо-пептонный агар (МПА) Инкубировали при 37°С в течение трех-пяти суток, изучали культурально-морфологические свойства выделенных бактериальных культур и проводили их дифференциацию Кокковую микрофлору дифференцировали путем пересева изолированных культур на солевой агар с 5-10% поваренной соли Дифференциацию энтеробактерий про-

водили с использованием мультимикротестов ММТЕ1. ММТЕ2 (ООО «Центр клинической фармакологии и фармакотерапии» i Ставрополь) и сред пестрого ряда

У животных с хроническими дерматитами и частыми их рецидивами проводили гематологические исследования (подсчет лейкоформулы), микроскопические и бактериологические исследования, определение общих физико-химических свойств мочи (М Уиллард, 2004, В Г. Скопичев, 2005) Общий анализ мочи проводили с применением экспресс-тестов DekaPHAN leueo (PLIVA -Lachema, Чешская республика)

Для экспериментального заражения использовали 12 беспородных клинически здоровых щенков 4-х месячного возраста, средней массой тела 3-5 кг, ранее не болевших дерматомикозами Опытных животных содержали в условиях, отвечающих зооветеринарным и санитарно-гигиеническим требованиям, в вольерах, в отдельных будках. Собак обеспечивали полноценным рационом кормления с минеральными добавками (0,8 граммов на 1 кг массы) Использовали накожный метод заражения, эпизоотический изолят культуры Trichophyton mentagrophytes var gyp-seum, полученный от собаки, больной трихофитией 20-дневную культуру гриба, выращенную на агаре Сабуро, растирали в стерильной ступке вместе с питательной средой и небольшим количеством физиологического раствора до получения гомогенной массы Затем материал для заражения при помощи шпателя втирали в предварительно выстриженную и скарифицированную поверхность кожи размером 6×6 см.

Проводили изучение влияния водорастворимых витаминов группы В на рост дерматофитов in vitro Для этого агар Сабуро обогащали препаратом «Витам» согласно наставлению по его применению. В качестве тестируемого объекта использовали вакцинные штаммы грибов Microsporum canis и Trichophyton mentagrophytes Предварительно готовили предметное стекло с рамкой, в которую вносили витаминизированный и стандартный агар Сабуро Проверенные на стерильность стекла с питательной средой помещали в чашку Петри для создания одинаковых условий роста Взвесь культуры вакцинного штамма каплями наносили на поверхность агара и инкубировали в термостате при температуре 28°С в течение 3-5 суток Ежедневно учитывали характер роста Проводили учет размеров длины и толщины гифов грибов Полученные результаты вносили в сводные таблицы и обрабатывали статистически

Для люминесцентной диагностики применяли переносную установку с ртут-но-кварцевой лампой ПРК-2 с фильтром Вуда.

Изучение эффективности применения препарата «Микосептин» проводили на модели экспериментальной трихофитии у собак Критерием эффективности препарата служили различия в сроках освобождения кожной поверхности от грибов, исчезновения клинических признаков заболевания, получения отрицательных результатов микологических исследований проб биоматериапа, отобранных от животных опытных и контрольных групп Для сравнения использовали мазь «Ям», рекомендованную для лечения трихофитии у животных Лечебную эффективность препарата определяли на естественно инфицированных животных

Достоверность результатов подтверждали путем статистической обработки

2. 0,8% Г5,6%

■ авитаминоз Ш бак.отигы Ш кяещ.отты 0 дерматомикозы Ы вотоэдроз 0 демодекоз 0 бак. дерматиты

Рисунок 1 — Структура дерматитов у собак и кошек, %

При изучении эпизоотической обстановки по дерматомикозам мелких домашних животных установлено, что в период наблюдения (1997-2005 гг.) ежегодно заболевало 25-27% собак и кошек от общего числа заболевших животных.

Изучая возрастные особенности возникновения дерматомикозов, выделили три группы животных (табл. 1).

Таблица 1 — Заболеваемость мелких домашних животных дерматомикозами в

Собаки Кошки

Возрастная группа Всего Из них больных Всего Из них больных

голов голов % голов голов %

Молодняк: до 7 месяцев 640 147 23 341 93 27

Взрослые: 7 месяцев — 7 лет 1770 793 28 1405 505 36

Стареющие: старше 7 лет 587 148 25 494 173 35

Первую группу составили котята и щенки от рождения до 7-месячного возраста. Во вторую группу объединили взрослых, наиболее активных животных, в возрасте от 7 месяцев до 7 лет. Третья группа — стареющие животные старше 7 лет.

При определении породной чувствительности к дерматомикозам среди кошек достоверных различий в результатах не установлено Заболевание регистрировали у представителей как распространенных (аборигенная, персидская, русская голубая, британская), так и редких пород кошек (ангорская, курильский бобтейл, донской сфинкс, корниш-рекс, скотиш-фолд)

Из 96 исследованных пород собак у 18 выявлен дерматомикоз (табл. 2) Таблица 2 — Заболеваемость собак дерматомикозами в зависимости от породной принадлежности

№ п/п Наименование породы Количество обращений в год В том числе заболело дерматомикозами

голов | %

1 французский бульдог 630 152 24

2 эрдельтерьер 194 45 23

3 чау-чау 445 89 20

4 такса 771 153 20

5 беспородные собаки 1399 269 19

6 спаниель 1544 283 18

7 американский 730 129 18

стаффордширский герьер

8 дог 271 47 17

9 немецкая овчарка 1708 295 17

10 пипчер 407 68 17

И ротвейлер 1361 217 16

12 доберман 332 49 15

13 боксер 788 116 15

14 среднеазиатская овчарка 526 77 15

15 пекинес 1070 153 14

16 пудель 872 117 13

17 кавказская овчарка 690 79 11

18 тойтерьер 403 41 10

Высокая заболеваемость отмечена у французских бульдогов, эрдельтерьеров, такс и чау-чау.

Анализируя годовую динамику возникновения дерматомикозов, установили у собак выраженную летнюю сезонность с увеличением количества животных с мая по август и снижением с сентября Максимальное количество больных собак выявлено в августе (15%), а кошек в октябре (13%)

Клиническая картина при дерматомикозах мелких домашних животных разнообразна. В ходе наблюдений мы отмечали острое и хроническое течение болезни, а также поверхностную, глубокую (фолликулярную), стертую (атипичную), скрытую (субклиническую) формы болезни

При осмотре собак, больных дерматомикозами, отмечали единичные или множественные безволосые участки, которые локализовались на отдельных частях тела. на морде, лапах, спине или боках. Одиночные очаги иногда сливались, образуя сплошную поверхность поражения.

У собак с густым шерстным покровом (чау-чау, немецкие, кавказские овчарки,

беспородные, др), а также с хорошо развитой подкожной клетчаткой (ротвейлеры, американские бульдоги шарпеи) часто отмечали ограниченные мокнущие участки

У собак с короткой жесткой шерстыо (такса, американский стаффордширский терьер, французский бульдог, дог и т д) безволосые очаги с гиперемированной кожей локализовались на спине, в подмышечных и паховых областях Отмечали воспалительную реакцию различной степени выраженности, зуд от легкого до изнуряющего, расчесы, образование корочек При субклиническом течении болезни у собак отмечали диффузное прореживание волос, иногда — перхоть

У кошек чаще отмечали бессимптомное течение болезни в виде затянувшейся линьки У бесшерстных кошек (5%) экзотических пород (донской сфинкс, корнищ-рекс) дерматомикозы проявлялись в виде мелких ограниченных воспалительных очагов неправильной формы с легким шелушением кожи на периферии и покраснением в центре, расположенных на различных участках тела.

В результате проведенных исследований были установлены факторы, способствующие возникновению дерматомикозов у домашних животных Это, прежде всего, увеличение численности и плотности содержания животных, миграция инфицированных животных из других регионов, несоблюдение санитарных правил содержания и выгула животных А также малоподвижный образ жизни большинства мелких домашних животных, несбалансированный по витаминам и минеральным веществам рацион кормления, пороки проводимой племенной работы (инбридинг), необоснованное использование антимикробных, витаминных и других лекарственных препаратов, приводящие к снижению защитных барьерных функций кожи

В некоторых случаях (17,8%) при тяжелой патологии и длительном течении заболевания нами отмечена недостаточная эффективность проводимого лечения

Гематологические исследования у большинства обследованных собак (84,6%) выявляли сдвиг нейтрофильного ядра влево, у 57,7% — увеличение количества лимфоцитов, у 7,6% — базофилов и эозинофилов У кошек выявляли сдвиг нейтрофильного ядра влево (62,8%), эозинофилию (53,4%), лимфоцитопению (79,1%) Эти показатели могут свидетельствовать о патологии, сопутствующей кожным болезням

Общий анализ мочи выявил у этих животных значительные изменения минерального, белкового и жирового обхчена Выраженную протеинуршо наблюдали у 30% собак и 45% кошек, наличие желчных пигментов (уробилиногена, билирубина) у 86% собак и 85% кошек

Обнаружение глюкозы в моче у 5% собак и 2% кошек свидетельствовало о нарушении функции поджелудочной железы, пиурии у 63% собак и 31% кошек — о воспалительном процессе органов выделительной системы

Таким образом, подтверждено, что дерматиты, трудно поддающиеся лечению, являются результатом функциональных нарушений со стороны органов выделительной, пищеварительной систем, а также желез внутренней секреции, которые ослабляют организм животного и нарушают процессы регенерации эпидермиса Это создает благоприятные условия для паразитирования микроскопических грибов

2. 2.2. Этиологическая структура дерматитов, в том числе дерматомикозов, у собак и кошек в условиях г. Омска

Заболевания кожи у мелких домашних животных, вызванные различными этиологическими факторами (грибами, эктопаразитами, бактериями, аллергенами и т.д.) имеют сходную клиническую картину

Поэтому результаты клинической диагностики позволяют поставить лишь предварительный диагноз на наличие дерматомикозов у обследованных животных.

При диагностике дерматомикозов учитывали данные клинического осмотра и люминесцентного исследования животных, результаты микроскопических и микологических исследований проб биоматериала

Микологические исследования показали, что лишь у 17,4% кошек и у 17,4% собак причиной дерматомикозов являлись патогенные грибы

От 9 животных (5 собак и 4 кошки) выделили культуры гриба Trichophyton mentagrophytes var gypseum, от 7 (3 собаки и 4 кошки) — Microsporum cams (табл 3) Таблица 3 — Результаты культурально-морфологических исследований проб

Вид возбудителя Собаки Кошки

п % п %

Tr mentagrophytes var gypseum 5 11,9 4 9,8

M cams 3 7,1 4 9,8

Условно-патогенные грибы 34 81,0 33 80,4

Всего 42 41

В результате проведенных исследований у 40% собак и 16,8% кошек установлено совместное течение дерматомикозов с эктопаразитозами и бактериозами Выявлено до 22 видов бактерий семейства Enterobactenaceae, осложняющих течение и усиливающих клиническое проявление дерматомикозов у животных Микроскопические исследования соскобов кожи у 1% кошек и 5,8% собак установили одновременно со спорами грибов наличие Notoedres cati, а у 4,2% кошек и 0,8% собак — No-toedres cati и Otodectes cwotis, у 32,9% собак — Demodex cams

Таким образом, дерматиты у собак и кошек в г Омске могут быть обусловлены наличием эктопаразитов (Notoedres cati, Otodectes cinotis, Demodex cams), бактерий и грибов В единичных случаях у собак выявляли кожную форму чумы

В результате проведенных микологических исследований получено 368 изо-лятов культур грибов, относящихся к 10 родам, 12 видам (табл 4)

Видовой состав микофлоры, персистирующей на поверхности очагов поражения кожи животных, больных дерматомикозами представлен патогенными (Microsporum cams, Trichophyton gypseum) и условно патогенными видами Среди условно патогенных были выделены плесневые грибы, относящиеся к родам Alternaría, Aspergillus, Bipolaris, Mucor, Pénicillium, Scopylariopsis и дрожжевые. Candida, Ro-dotorula

Таблица 4 — Патогенные и условно патогенные грибы, паразитирующие на коже собак и кошек при дерматитах

№ _ _ Частота . Возбудитель п/п изоляции № _ Частота , Возбудитель п/п изоляции

, Alternaria alter- лп, 1 , 24,3% nata 2 Rhodotorula rubra 11,2% 3 Aspergillus ßavipes 10,3% 4 Penicilhum 10,3% 5 Scopylariopsis bre- )Q 3% vicauhs ‘ 6 Mucor 3,7% 7 Candida albicans 2,8% 8 Aspergillus mger 1,9% 9 Bipolaris 0,9% 10 Microsporum cams 7,5% 11 Trichophyton ajelloi 1,9% 12 Trichophyton mentagrophytes

Микологические исследования показали, что лишь у 17,4% кошек и у 18% собак причиной дерматомикозов явились патогенные грибы

У большей части животных с поверхности патологического очага выделяли только условно патогенную микофлору

Таким образом, было установлено, что видовой состав возбудителей дерматомикозов представлен патогенными грибами родов Tnchophyton и Microsporum, плесневыми грибами родов Alternaria, Aspergillus, Btpolatis, Scopylariopsis, Pénicillium, Mucor и дрожжеподобными Rodotorula, Candida

2. 23. Влияние водорастворимых витаминов группы В на рост и развитие дерматофэтов in vitro и in vivo

Некоторые исследователи при дерматофитозах собак и кошек рекомендуют применять вместе с противогрибковыми препаратами диетические рационы Waltham Diet Sensitivity Control со специально подобранным белковым составом, обогащенные антиоксидантами (витамин Е, таурин) и содержащие специальный биодоступный комплекс компонентов (линолевая кислота-цинк-биотин-ПНЖК-витамины) Они способствуют заживлению и восстановлению кожного покрова у животных (Н В Кузнецова и соавт, 2003)

ПД Евдокимов (1974) и В.В Дюкарев (1985) считают необходимым применение витаминизированных премиксов при заболеваниях кожи По мнению других авторов, некоторые виды дерматофитов активно используют для своего развития витамины группы В, в частности тиамин (G С Ainsworth, L К Georg, 1954, О Ditrich, M. Ocenasek, 1982) Поэтому использование кормовых добавок, обогащенных витаминами этой группы, может активизировать рост грибов, усиливать их вирулентность и развитие воспалительного процесса при дерматомикозах у собак и кошек

Для уточнения целесообразности применения витаминов группы В при лечении дерматомикозов у собак и кошек, изучали их влияние на рост и развитие дерматофитов m vitro и m vivo

Для этого использовали агар Сабуро, изготовленный по обычной прописи (контроль) и с добавлением витаминного комплекса «Витам» (ООО Биоветсервис, г. Томск, Серия №11.03.00), Посевы культивировали при 28°С с ежедневным учетом особенностей роста культур грибов.

Изолят Trichophyton mentagrophytes var. gypseum после 15 пассажей на агаре Сабуро со стабильными культурально-морфологическими свойствами брали в качестве тест-культуры.

В опытных и контрольных пробирках отмечали рост гриба Trichophyton mentagrophytes на 5-7 сутки. Колонии грибов в опытных пробирках отличались наиболее активным развитием субстратного и воздушного мицелия. Регистрировали увеличение длины и толщины гифов гриба Trichophyton mentagrophytes в опытных образцах по сравнению с контрольными в 1,9 и 1,3 раза (р-0,002) соответственно (рис. 2-3).

опыт 1 опыт 2 опыт 3 опыт 4 опыт 5 среднее 0 длина гифов гриба, культивированного на среде, обогащенной витамином Н длина гифов гриба, культивированного ¡а стандартной среде Сабуро

Рисунок 2 — Влияние водорастворимых витаминов на длину гифов гриба Trichophyton mentagrophytes, мкм

опыт 1 опыт 2 опыт 3 опыт 4 опыт 5 среднее 0 размер гифов гриба, выросшего на питательной среде с добавлением витаминов 0 размер гифов гриба, выросшего на обычной питательной среде

Рисунок 3 — Влияние водорастворимых витаминов на толщину гифов гриба Trichophyton mentagrophytes, мкм

Результаты исследований, проведенных in vitro, свидетельствуют о том, что водорастворимые витамины группы В способствуют более интенсивному росту триба Ii ichophyton mentagrophytes на агаре Сабуро.

Изучение влияния водорастворимых витаминов группы В на рост и развитие дерматофитов in vivo проводили на 12 собаках, экспериментально инфицированных 20-ти суточной культурой Tr mentagrophytes var gypseum Учитывали интенсивность развития клинических признаков заболевания (наличие воспалительной реакции, гиперемии, зуда и шелушения, размер воспалительных очагов), результаты микроскопических исследований и выделения ретрокультуры из проб биоматериала от экспериментально инфицированных животных

В кормлении животных контрольной группы использовали обычный рацион, опытной — дополнительно «Дрожжи кормовые», содержащие витамины группы В, в дозах, рекомендуемых наставлением по их применению

В результате проведенных исследований у всех опытных животных отмечали образование воспалительных очагов величиной 3-5 см в диаметре, гиперемию и отечность кожи, наличие серозно-гнойного экссудата, образование плотных корочек, зуд В контрольной группе у трех собак наблюдали образование небольших (до 3 см в диаметре) шелушащихся воспалительных очагов со слабо выраженной гиперемией, у оставшихся животных — гиперемию и отечность кожи с последующим незначительным прореживанием шерсти

Длительность инкубационного периода в контрольной группе животных составила 7±7, а в опытной — 7±3 суток. У животных опытной группы отмечали более выраженную воспалительную реакцию кожи и экссудативные явления, чем у контрольных животных.

Микроскопические исследования проб биоматериала {соскобов с кожи и шерсти) выявили наличие спор дерматофитов На питательных средах во всех случаях выделена ретрокультура гриба Trichophyton mentagrophytes var gypseum.

Результаты исследований, проведенных in vivo, свидетельствуют о том, что введение в рацион животных, экспериментально инфицированных грибом Trichophyton mentagrophytes, водорастворимых витаминов группы В, способствует сокращению инкубационного периода заболевания, проявлению более выраженной воспалительной реакции кожи и более длительному течению заболевания. Поэтому их включение в комплекс лечения дерматомикозов мелких домашних животных, обусловленных грибом Trichophyton mentagrophytes, нецелесообразно

2.2.4. Эффективная схема применения мази Микосеитин при дерматомикозах собак в кошек

В течение длительного времени мазь Ям применяется при лечении дерматомикозов крупного рогатого скота и мелких домашних животных Однако при лечении с помощью данного препарата поражений кожи у кошек различных пород и собак мелких, декоративных пород очень часто наблюдали раздражение кожи и интоксикацию

Целью исследований являлось получение эффективной схемы применения мази Микосептин при дерматомикозах собак и кошек

Выбор мази Микосептин был обусловлен низкой стоимостью, в сравнении с существующими препаратами этой группы (ламизил, низорал), что имеет значение при выборе препаратов для лечения домашних животных. Эта мазь на протяжении нескольких лет с успехом используется в медицине для лечения поверхностных микозов

Изучение эффективности применения препарата Микосептин проводили на модели экспериментальной трихофитии, наличие которой у животных подтверзда-ли результатами микроскопических исследований и выделения ретро культуры гриба Trichophyton mentagrophytes на агаре Сабуро. Критерием эффективности препарата служили различия в сроках освобождения поверхности кожи от грибов, исчезновение клинических признаков и отрицательные результаты микологических исследований проб биоматериала от животных опытных и контрольных групп. Полученная разница позволила дал. оценку эффективности терапевтического действия препарата.

Препарат применяли животным в разгар развитая клинических признаков экспериментальной трихофитии по двум схемам. Контрольной группе (схема 1) -2 раза в день в течение 1 недели, затем 1 раз в день в течение 1 недели, а потом — 2 раза в неделю (в соответствии с наставлением по применению), опытной (схема 2) — 2 раза в день до получения отрицательных результатов микологических исследований проб биоматериала, отобранных от животных.

В результате проведенных исследований установили, что применение мази Микосептин у собак, экспериментально инфицированных культурой гриба Trichophyton mentagrophytes, с лечебной целью наиболее эффективно по 2 схеме (табл. 5), так как приводит к сокращению сроков исчезновения клинических признаков у животных в среднем по группе на 7 суток, а получения отрицательных результатов микологических исследований — на 8 суток в сравнении с применением препарата по схеме 1.

Таблица 5 — Сравнительная эффективность разных схем применения мази Микосептин при экспериментальной трихофитии у собак

Группа животных (п=6) Длительность проявления клинических признаков, (сутки) Сроки получения отрицательных результатов микологических исследований, (сутки)

Схема 1 21,25*0,47 43,20±0,58 Схема 2 13,25±0Д5 35,25±0,62

Для изучения сравнительной эффективности мазей Ям и Микосептин при лечении дерматомикозов у кошек были подобраны опытная и контрольная группы животных, по б голов в каждой. У животных отмечали характерные признаки поражения шерстного покрова в виде аллопеций, неправильной, или округлой формы с выраженным шелушением кожи. Микологические исследования биоматериала выявляли элементы грибов.

Животным проводили ежедневные 2-крагные обработки пораженных участков кожи противогрибковыми мазями, при этом опытным животным наносили мазь Микосептин, контрольным — Ям После нанесения препарата на поврежденный участок кожи в течение 10-15 минут животных удерживали для предотвращения слизывания мази, после чего с пораженных участков салфеткой удаляли излишки препарата

Микологическое выздоровление определяли на основании результатов лабораторных исследований (микроскопических и выделения культуры гриба) Динамику выздоровления контролировали, проводя повторные исследования соскобов с кожи с интервалом 7 суток

Животных считали здоровыми только при отсутствии клинических признаков заболевания и получении трех отрицательных результатов микологических исследований проб биоматериала от животных контрольной и опытной групп

Таблица б — Сравнительная эффективность применения мазей Микосептин и Ям при лечении естественной трихофитии у кошек

Группа Длительность проявления Сроки микологическо-

животных клинических признаков, го выздоровления,

(п=6) (су пси) (сутки)

Микосептин 14,25±0,25 36,25±0,62

Ям 23,25±0,47 47,20±0,58

В результате установлено, что при лечении кошек, больных трихофитией, посредством нанесения на пораженную кожу мази Микосептин длительность проявления клинических признаков составила 14-16 суток; отрицательные результаты микологических исследований получили на 36-38 сутки (таблб) Препарат не вызывал раздражения, легко наносился и быстро впитывался

При применении мази Ям клиническое выздоровление у животных регистрировали на 24-25 сутки, отрицательные результаты микологических исследований -на 47-49 сутки При этом у одного животного отмечали признаки отравления (отказ от корма и рвоту) на 5-6 сутки лечения, а у трех — выраженное беспокойство, гиперемию кожи и усиление зуда Консистенция мази затрудняет нанесение и удаление ее с поверхности кожи

Позже провели сравнительную оценку эффективности применения мазей Микосептин (группа 1) и Ям (группа 2) при лечении спонтанной трихофитии у собак В первой группе животных отрицательные результаты микологических исследований регистрировали на 37-42 сутки Длительность появления клинических признаков составляла 16-19 суток, побочных эффектов не отмечено

У животных второй группы отмечали исчезновение клинических признаков заболевания на 20-22, а отрицательные результаты микологических исследований — на 49-55 сутки При этом у двух собак был выражен зуд, у одной — гиперемия кожи, повышенная саливация, снижение аппетита, вялость

3. выводы

1 Нозологический профиль дерматитов собак и кошек в условиях г Омска представлен 7 единицами, среди которых доминируют дерматомикозы (61%) Наиболее восприимчивы собаки пород- французский бульдог, эрдельтерьер, чау-чау и такса. У кошек не установлено породной и возрастной восприимчивости к дерма-томикозам Максимальное количество больных дерматомикозами собак выявляли в июле-августе, кошек — в июне и октябре

2 Предрасполагающими факторами, способствующими возникновению и развитию дерматомикозов у собак и кошек, являются нарушения функции органов выделительной и пищеварительной систем, а также желез внутренней секреции У таких животных отмечали изменения показателя активности ионов водорода (варьировал от 5,0 до 10), выраженную протеинурию, выявление желчных пигментов (уробилиноген, билирубин)

3 Видовой состав возбудителей дерматомикозов у собак и кошек в г Омске представлен патогенными грибами родов Trichophyton и Microsporum, условно патогенными плесневыми Alternaría, Aspergillus, Bipolaris, Scopylariopsis, Pemcillium, Mucor и дрожжеподобными Rhodotorula и Candida Установлено, что на коже животных, пораженных дерматомикозами, персистирует до 22 видов бактерий семейства Enterobacteriaceae

4 В экспериментах in vitro и in vivo установлено стимулирующее влияние витаминов группы В на рост н развитие Trichophyton mentagi ophytes Применение их при лечении дерматомикозов нецелесообразно, так как способствует сокращению инкубационного периода заболевания, усилению воспалительной реакции со стороны кожи, удлинению сроков проявления клинических признаков заболевания и выздоровления животных

5 Применение мази Микосептин при экспериментальной и естественной трихофитии у собак при ежедневной двукратной обработке очагов поражения сокращает по сравнению с мазью Ям сроки исчезновения клинических признаков заболевания на 4±1,25 суток (20%), получения отрицательных результатов микологических исследований на 12±1,5 суток (24,4%),

6 Применение мази Микосептин при естественной трихофитии у кошек способствует по сравнению с мазью Ям сокращению сроков исчезновения клинических признаков заболевания на 9±1,5 суток (38,7%) и получения отрицательных результатов микологических исследований на 11±1,25 суток (23,8%).

4. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Результаты исследований, отраженные в методических рекомендациях «Эпизоотология, диагностика, профилактика и лечение дерматомикозов мелких домашних животных», рассмотренных и утвержденных Ученым советом ГНУ ВНИИБТЖ СО РАСХН (протокол № 9 от 19 12 2005 г.) и подсекцией «Инфекционная патология животных в регионе Сибири и Дальнего Востока» (протокол № 1 от 17 01 2006 г.) целесообразно внедрить в ветеринарную практику и использовать в высших учебных заведениях

Материалы по распространению дерматомикозов мелких домашних животных и схемы их лечения используются в лечебной практике ветеринарными врачами, входящими в Омскую областную Общественную организацию «Ассоциация практикующих ветеринарных врачей»

Данные о распространении, клинико-эпизоотологических и этиологических особенностях дерматомикозов мелких домашних животных используются в учебном процессе при изучении курса эпизоотологии на кафедре инфекционных и инвазионных болезней института биотехнологии и ветеринарной медицины ФГОУ ВПО «Тюменская государственная сельскохозяйственная академия»

5. СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1 Корреляция между локализацией спор дерматофитов на волосе собак и клиническими их проявлениями /Соавт Л Н Гордиенко, А И Михайлинский //Актуальные вопросы ветеринарной медицины мелких домашних животных Матер. науч -практ конф факультета ветеринарной медицины НГАУ /НГАУ — Новосибирск, 2001 -С 139-141

2. Зооантропокозы мелких домашних животных в мегаполисе г Омска /Соавт Л Н Гордиенко, Е В Пилыцик //Матер девятого Московского междунар ветеринарного конгресса — Москва, 2001 — С 24-25

3 Факторы, влияющие на течение дерматомикозов у мелких домашних животных /Соавт. Е В. Куликова, Л Н Гордиенко //Актуальные проблемы ветеринарной медицины мелких домашних животных Матер 2-ой регион науч -практ конф -Новосибирск,2002 -С74-77

4 Влияние водорастворимых витаминов и микроэлементов на интенсивность роста дерматофитов /Соавт Е В Куликова, Л Н Гордиенко //Там же — С. 94-96

5 Распространение вирусных, бактериальных и паразитарных заболеваний у мелких домашних животных /Соавт Л Н Гордиенко, Е В Пильщик // Матер междунар науч -практ конф, посвященной 40-летию Северного НИИ животноводства и ветеринарии. -Петропавловск, 2003.-Т 2-С 376-377

6 Интенсивность роста поверхностной грибковой микрофлоры при наличии водорастворимых витаминов в среде их обитания /Соавт Е В Куликова, Л Н Гордиенко//Матер регион науч конф , посвященной 175-летию аграрной науки -Омск,2003 — С392-396.

7 Этиология дерматитов мелких домашних животных в условиях г Омска /Соавт • Л Н Гордиенко, Е В Пильщик //Там же — С 396-398

8 Распространение дерматомикозов среди синантропных видов животных в мегаполисе г Омска /Соавт. Е В Куликова, Л Н Гордиенко // Матер, межрегион науч -практ конф, посвященной 75-летию Российской академии с -х наук -Омск, 2004-С 46-48

9 Видовой состав грибковой микрофлоры, персистирующей на коже животных с признаками дерматомикоза /Соавт Л Н Гордиенко, Д М Селиванова //Матер 12 междунар конгресса по болезням мелких домашних животных -Москва, 2004 — С 97-99

10 Динамика сезонности дерматомикозов у собак в условиях Сибири /Соавт

А.И Михайлинский, ЛН Гордиенко //Актуальные вопросы ветеринарной медицины мелких домашних животных. Матер Сибирской науч -практ конф — Новосибирск, 2004 — С 140-141

11 Дифференциальная диагностика дерматитов различной этиологии у домашних плотоядных /Соавт А И Михайлинский, Л Н Гордиенко // Матер 4-ой регион науч конф , посвященной 100-летию со дня рождения заслуженного веге-ринарного врача РФ И В Окунцова — Омск, 2005 -С.161-167

12 Микрофлора очагов поражения кожи мелких домашних животных с признаками дерматомикоза/Соавт JIH Гордиенко//Там же — С 170-175

13 Показатели лейкоцитарной формулы у собак при экспериментальной трихофитии /Соавт. Е.Г Важенина, Л Н Гордиенко // Там же — С 82-84

14 Методы диагностики дерматитов мелких домашних животных, вызванных патогенной и условно патогенной микрофлорой /Соавт Л Н Гордиенко //Матер 13-ого Московского междунар ветеринарного конгресса по болезням мелких домашних животных — Москва, 2005 — С 64-67

15 Клиническое проявление трихофитии у собак при экспериментальном заражении /Соавт Е Г Важенина, Л Н Гордиенко // Матер Сибирского междунар ветеринарного конгресса — Новосибирск, 2005 — С 47-48

16 Видовой состав грибковой микрофлоры, персистирующей на коже животных с признаками дерматомикоза //Там же — С 48-49.

17. Стимулирующее влияние водорастворимых витаминов группы В на рост и жизнеспособность дерматофитов in vivo и in vitro /Соавт Л Н Гордиенко, Е В Куликова, Е.Г Важенина //Материалы 14-ого Московского междунар ветеринарного конгресса по болезням мелких домашних животных — Москва, 2006.-С 73-74

18 Иммунологические реакции у собак при специфической терапии экспериментального дерматофитоза /Соавт Е,Г Важенина, ЛН Гордиенко //Вестник Тюменского Государственного университета- № 6 — 2006 — С 213-216

19 Поверхностные микозы мелких домашних животных их этиология и распространение /Соавт Л Н Гордиенко, Д М Селиванова, Е Г Важенина //Ветеринарная Патология — № 2 (21) — 2007 — С 143-145

На правах рукописи

НИКИТУШКИНА НАДЕЖДА АЛЕКСАНДРОВНА

КЛИНИКО-ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ И ЭТИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ДЕРМАТОМИКОЗОВ У СОБАК И КОШЕК, СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ СХЕМ ИХ ЛЕЧЕНИЯ

16 00 03

16 00 04

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

— ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология,

— ветеринарная фармакология с токсикологией

Новосибирск — 2008

Подписано к печати 28 02 2008 Формат бумаги 60×84 1/16 Печать оперативная Гарнитура Times New Roman Уел печ л 1,0 Тираж 100 экз

Отпечатано с оригинал-макета в типографии ООО «Вариант-Омск» 644099, г Омск, ул Фрунзе, 1 Тел 211-600

Ветеринарная клиника, КардиоВет, Колодий Ирина Владимировна, узи животных, кардиология, терапия, хирургия, травматология, дагностические услуги, анализы, биохимия, общий анализ, колодий ирина, аржановская елена, сёмина виктория, науменко олеся

Профилактика, диагностика и лечение болезней мелких домашних животных современными методами на профессиональном оборудовании

 

Наша ветеринарная клиника оборудована по последнему слову техники

Есть всё необходимое для оперативной постановки диагноза, проведения операций и мониторинга состояния пациента

При клинике работает СТАЦИОНАР

 

ВЕТЕРИНАРНАЯ КЛИНИКА

КАРДИОВЕТ

 

г. Ростов-на-Дону

ул. Вятская, 120 «Б»

 

+7 (863) 279-78-73

+7 (928) 900-94-81

+7 (928) 611-69-10

 

РАБОТАЕМ ЕЖЕДНЕВНО

с 10.00 до 21.00

Прием животных на

УЗИ, РЕНТГЕН и ЭНДОСКОПИЮ

ведется по

предварительной записи!

 

РУКОВОДИТЕЛЬ ВЕТЕРИНАРНОЙ КЛИНИКИ

Кандидат биологических наук, ветеринарный врач

КОЛОДИЙ

Ирина Владимировна

 

ВЕДУЩИЕ СПЕЦИАЛИСТЫ

Главный ветеринарный врач

СЁМИНА

Виктория Владимировна

Ветеринарный врач

НАУМЕНКО

Олеся Александровна

Ветеринарный врач

АРЖАНОВСКАЯ

Елена Александровна

Ветеринарный врач

ФЕДОТЕНКО

Оксана Валерьевна

 

Ультразвуковая и лабораторная диагностика, рентген, кардиология, терапия, эндоскопия, дерматология, онкология, хирургия, травматология, ортопедия, стоматология, офтальмология, чипирование, лечение экзотических животных, диетические корма, ветаптека

 

***************************************** НАШИ ГРУППЫ В СОЦИАЛЬНЫХ СЕТЯХ *****************************************

Розовый лишай у кошек ростов на дону

Кто чем советует кормить, мне говорили, что сырую говядину вообще давать можно не чаще раза в неделю, когда свою старую в плане возраста кошку лечил, то там болезнь и методы лечения менялись в зависимости от клиники. Да, все разное советуют. Именно этому врачу доверяю, он нам кота с того света вытащил. Кстати сырую говядину надо промораживать основательно перед тем как кошкам давать.

Вроде как это альтернатива варке — так же убивает микробы. А так по его словам «вы когда-нибудь видели, чтобы кошка или собака в природе варили себе мясо? В общем то, я и не думаю что в природе кошки живут по лет, хотя, справедливости ради, там еда далеко не основной фактор риска.

А вот насчет охлаждения это еще вопрос, насколько я помню из школьного курса биологии паразиты уничтожаются при достаточно сильной заморозке, что то типа С, хотя могу ошибаться, давно уже это было. В общем нам нужны ветеринар, а желательно консилиум, и те самые пол-литра, которые всегда помогают разобраться в сложных вопросах. Алкоголики до 80 лет доживают, глуша водку почти без остановки есть один субъект не так далеко, каждый день стабильно выпивает неплохой объем водки неизвестного происхождения , а кто-то от хорошего виски через неделю загнется.

Тут чисто индивидуально, может и протянуть, а может и нет. Хотя риск проблем выше, спорить не буду. Мы своих экзотов кормим натуралкой, беременным даем Hills Вроде давно всем и каждому известно, что кормами отечественного производства кормить животных нельзя. Ибо года и наступает мочекаменная. Даже хвалёный Роял Канин, с тех пор как права на его производство выкупили российские производители, вет. Мы снимали в Саратове квартиру, у хозяйки было 3 кошки и кот.

Кормила как раз этим г Кот в декабре умер со схожими симптомами, что вы описываете. А в России Роял канин только отечественного производства продается?

В Беларуси просто австрийский сухой и французский консервы. А то тут такие отзывы уже про роял сказали, что прям начал думать что тоже своего котэ травлю. А сейчас мы в провинцию перебрались, в зоомагазинах только российский.

Свою бри он кормит как раз фр. Мы не очень кормом увлекаемся. Берем Hills для беременнных и кормящих кошек, потому что натуралкой их сколько ни корми — не наедаются. Вот так вот должно быть :. Ветеринар предложил перевести на этот корм моего кота, у которого после про плана шерсть кусками вылезла. Кормим им, шерсть стала нормальная, проплешины зарастают.

А вот хиллс ругал, говорит добавок очень много вкусовых, которые и могли вызвать реакцию. Так-то была проведена экспертиза. Корм в норме. Поговаривали что-то о каком-то мутировавшем вирусе, но официальных данных нет. В поддержку фейковости вашего предположения говорит то, что несколько кошек со схожими симпотомами вообще не кормились этим кормом. Один из отзывов покупателей «Нашей марки». Женщина нашла в корме овальную гранулу, предназначавшуюся для корма собак. Украина, Донецкая область, Славянск.

Кошка не ест неделю только немного с руки Пьет только да и похудела. Надеюсь это не те же причины что и у вас. Вирус никем не подтвержден. Несите к врачу, сдавайте анализы. Анализы нужны и на токсикологию. И да, чем кормите? У вас вообще вариантов нет, я так понимаю с чел лекарствами тоже беда. Лекарства остались из других квартир, люди уехали, ключи оставили.

Домашняя, на улице не была. Да и не вялая. Думаю у нас другая проблема. Фрискас — тоже плохой корм. Попробуйте ее день не кормить, только воду давайте, заливайте из шприца периодически, если сама не пьет.

На след. Корм не давайте. Не подходит ей скорее всего.

Давно фрискасом кормите? Кормите из бюджетных felixом, если подороже Happy Cut это я все про паучи. По крайней мере у собаки улучшилась шерсть нет перхоти и поправился. Acana хороший корм, правда дорогой. Сами кормим и кошку и собаку им. Сам с Ебурга, про болезнь узнал из газеты, не думал что у нее такой размах. Буду теперь пристальней следить за состоянием кошки. Акану по крайней мере во Франции делают, а учитывая его усваиваемость выходит не сильно дороже обычного корма.

Хотя в вет. Не от любого сухого корма, а от низкокачественного, типа вискаса, фрискаса, китикета, педегри, чаппи, роял канин и проч. Корм из мяса не может стоить дешевле куриной требухи Надо кормить хорошим сухим кормом, который подходит коту кастрированный или нет. Если кота именно самца кормить дешевым, то да, многие умирают почки страдают.

Кстати, судя по статистике, РК на втором месте. Симптомы действительно очень похожи. Кот весил 11 кг? Или у вас особая крупная порода котов или вы долбоеб, который позволил своему коту страдать ожирением, а хаять начал плохой корм, каким роял канин, имхо, не является.

Breadcrumb

Получается, что является. У моей бриташечки еще и шерсть лезла сильно. Но, я , как и Вы считала Роял Канин кормом премиум класса, и даже подумать не могла, что сгублю им свою любимицу. Моя кошка буквально «сгорела» за 4 дня. Симптомы те же: вялость, сонливость, отказ от еды и питья. При этом «стул» в норме. Обратились в «ветеринарку»: слизистые без особенностей, t в норме, живот безболезненный. Делали гомеопатические инъекции.

В последний день на 4 день после начала болезни кошка перестала реагировать на раздражители, появилось обильное слюнотечение с неприятным запахом и водянистые выделения из носа, наблюдалась постепенная парализация. Перед смертью обильная рвота желчью. Кормили Роялом для британских кошек. Вы хоть читали, что я написал. Мы бегаем — язык на плече. Никто не берет корм на анализ, я не знаю, почему.

И если продукт признают опасным так контора попадает по крупному. Ни кто не хочет сориться друг с другом в этой среде. Не по этому. Как мне объяснили, они не могут дать гарантии, что найдут это вещество, даже если оно там будет. Если это вещество там есть то его найдут.

А если его нет то не найдут. Наши СЭС если их пнуть могут вещество на атомы разобрать. Я был в СЭС. По крайней мере у нас они могут обнаружить всего веществ. Я звонил в Московские компании, которые проводят замеры в квартирах. Также сказали, что на изониазид проверить не могут. Так что бре — не бред, а проверить, как оказалось, сложно. Вы неправы, анализом занимается много частных фирм, и на сертификаты им плевать, никакой «этой среды» тут нет.

Им вообще нет разницы, что вы принесете. Прокуратура тут точно не поможет, что за чепуха? Определение изониазида не входит ни в какой список обязательных анализов для кормов животных. Значит так. Ветеринар ваш — долбоёб. Во-первых, от изониазида кошка помрет за пару часов, а не несколько дней.

Во-вторых, симптоматика совершенно другая при отравлении изиком. В третьих, вы сами говорите про домашнесть кошек и наличие собаки.

Клиническая микология — это грибковые заболевания и инфекции, передающиеся спорами грибов. Микология изучает строение и появление грибов и грибковых заболеваний, влияние на окружающую среду и на человека. Многие инфекционные заболевания передаются грибами — они невидимы невооруженному глазу человека, но слишком много проблем они доставляют пациентам.

В общем, заморили собственных животин, а сейчас виноватых искать будете. У вас есть вет. Симптоматика с отравлением изониазидом или тубозидом совпадает чуть более чем полностью приведите свою версию симптомов с пруфами.

Скорость наступления смерти зависит от количества попавшего вещества. Одна съела больше — слегла за 3 дня. Вторая чуть меньше — промучалась 6 дней. И потом, на руках есть заключение о том, что в тканях животного найден изониазид. Вы же доказываете, что это не он. Вам не смешно самому-то? Нет, ветобра нет, врать не буду. Но с темой знаком крайне близко.

Стригущий лишай: признаки, профилактика и лечение

Два-три часа и животное мертво. Симптоматика — пена, судороги, смерть. Предлагаю обменяться пруфами ко всеобщему удовлетворению. Скан плз заключения? А уж версия, что изик содержится в корме, вообще критики не выдерживает, кмк. Не нужно путать острое и хроническое отравление. Описанные вами симптомы находятся по запросу «отравление животного изониазидом».

При этом — для собак. Кошки менее остро реагируют на это вещество. Прибавьте сюда небольшие дозы и получите все тоже самое, но не в течение часов, а в течение нескольких дней. Почитайте мои симптомы в теме и все поймете. С чего же не выдерживает критики содержание яда в корме? Я уже писал свою версию на форуме, напишу и тут.

Есть 3 варианта попадания этой дряни в корм: 1.

Лишай у кошек Разберемся, что за заболевание такое — лишай, почему кошки им страдают и как заражаются. И самое главное, как эту болезнь лечить. МарИНА Михеенко. Чтобы отбить привычку тискать уличных животных, родители рассказывали сказки об ужасных последствиях заражения лишаем.

При производстве 2. При хранении 3. На конечном пункте продажи Было предположение о некачественном сырье, и подошел бы пункт 1, но тут много неувязок. При плохом сырье было бы гораздо больше пострадавших. И все-таки на производстве есть контроль качества. Какой-никакой, а есть. Третий пункт также отпадает, потому что слишком палевно и я знаю продавца, у которого сам покупал корм — не могли. А вот второй пункт самый жизнеспособный и как раз объясняет вообще все. Есть разные склады, на которых хранится корм.

Есть злоумышленник, решивший потравить животных. Например, при помощи шприца в пакеты впрыскивается отрава. Естесвенно, не до всех пакетов можно добраться — это объясняет то, что потравились не все кошки, питавшиеся этим кормом.

Впрыснув яд в пакет, его концентрация будет неравномерной. Это объясняет то, что животные травятся не все сразу а кто-то и совсем не травится. Тот корм, который был с «отравленного» склада разошелся по разным магазинам.

Вот вам вспышки в разных местах. Подтвержу для собак. Если в первые час-полтора не успеть положить под капельницу — собаку не спасают.

Я прошлой осенью успел доехать до круглосуточной ветеринарки, а вот несколько собак со двора не спасли. Каким методом был определен изониазид?

Откуда лишай у кошки

На бумажке нет отметки соответствующей. ЗЫ: Насчет хронического и острого вы правы, безусловно. Если анализ в Москве вас устраивает, напишите мне на o bk.

Утром был бодр и поел нормально.

Пятнышко за пятнышком

В обед хлоп — и нету. Питание исключительно хиллс — другого и ни ел. Породистая была морда.. PS Кемеровская обл. У меня две кошки жрут дешевые эти китекеты не только их, но и рыбу и куринную требуху и не болеют, не хворают. Одна родила котят, здоровых и, как ни странно, больших.

А тут, всякие хиллсы, канины, аканы и т.

Лишай у кошек

И че то мрут, че то с ними не так Вакдерм болезненный укол и отказ от его применения в свое время был еще из-за вызывания им абсцессов. А еще можно потерять время и заразиться самому, ведь схема лечения вакцинами заключается в том что, необходимо уколоть один раз, после через 2 недели повторно, когда не излечиваются назначают и третий укол. За это время болезнь может распространиться еще больше.

Какие медицинские средства наиболее эффективны. Применение местных средств зачастую бывает достаточным, особенно пока котята маленькие и противогрибковые средства назначать рано. Животное купают по схеме или наносят препарат на пораженные участки, но обязательно не в чистом виде, а разведенным с водой читать внимательно инструкцию или соблюдать рекомендации врача.

Также можно использовать лайм сульфур тоже в разведении или противогрибковые человеческие шампуни менее эффективны.

Каждый человек слышал о таком инфекционном кожном заболевании, как стригущий лишай, но не каждый знает, как определить его симптомы и выявить болезнь в начальной стадии. Стригущий лишай по праву считается очень заразным инфекционным поражением кожи, вызываемым патогенным грибком Microsporum и Trichophyton.

Плохо себя зарекомендовали по опыту фунгин и шампунь пчелодар. Грибок от простой воды больше распространяется, поэтому просто мыть запрещается, использование хлоргексидина, гормональных мазей не желательно.

Врач к местному лечению, сразу или спустя какое-то время, может подключить курс противогрибковых человеческих препаратов, например тербинафин, итраконазол и другие. Именно они, а не вакцина — это основное лечение. Когда необходимо обращаться к ветеринару?

Клиническая микология

Лишай может быть не только основным заболеванием, но и симптомом других болезней. Сниженный иммунитет у кошек может быть вызван хроническими вирусными болезнями — иммунодефицитом или лейкемией кошек.

Поэтому врач может предложить сдать анализы на эти две инфекции, в особенности, если лечение долго не помогает. Местные обработки, противогрибковые препараты, формирование хорошего иммунитета и обработка помещения — основное в лечение. Также может придется побрить пораженное место дополнительно, чтобы легче было мыть шампунем.

Поэтому необходимо обращаться к ветеринарному врачу, а не лечить это заболевание самостоятельно. А после проведенного курса противогрибковых препаратов и исчезновению признаков заболевания, чтобы полностью понять прошел ли грибок, врач может взять шерсть снова на посев. Аккуратнее с люминесцентной диагностикой.

Потому что уже даже при полном излечении пораженная шерсть может светится под лампой Вуда остаточный эффект.

Purina One Cat Main Menu

Лишаем животное может заразиться от другого больного животного. Фото: pixabay. Передается ли лишай от кошки человеку? Меры предосторожности дома. Поэтому, когда диагностируется лишай, многие пытаются тут же избавится от животных например, когда только подобрали на улице. Конечно это довольно неприятно — заразиться и лечиться потом, но это заболевание не смертельное и если соблюдать все правила гигиены трогать лучше в перчатках, обработка одежды после контакта и правильного лечить и не пускать на самотек, то процент того, что вы можете заразиться не такой и высокий.

Конечно надо не допускать животных к детям и держать на карантине, чтобы споры грибов не распространялись по квартире. Я ни в коем случае не хочу, чтобы владельцы заразились и заболели этим неприятным заболеванием, но мне также жалко животных, которые могли бы попасть в любящую семью, а их выбрасывают снова на улицу.

Тем самым вдобавок распространяя далее инфекцию. Какие последствия могут быть от запущенной формы лишая у кошки? При неправильном лечении может наступить генерализованная форма, у животного ухудшается качество жизни, процент заражения человека в данном случае уже намного повышается, а может и произойти спонтанное самоизлечение исчезновение признаков поражения , в зависимости от иммунитета. О нас Руководство Организационная структура Документы Лицензии Реквизиты Наши новости Специалистам Вакансии Страховые медицинские организации Антикоррупционная политика СОУТ Наши врачи Расписание и запись Лечение и обследование Права и обязанности граждан в сфере охраны здоровья Стандарты оказания медицинской помощи Федеральные клинические рекомендации Перечень заболеваний и состояний, оказание медицинской помощи при которых осуществляется бесплатно Платные медицинские услуги Косметология Услуги и цены Иностранным гражданам Лабораторные услуги Нормативные документы Филиалы Азовский Белокалитвинский Волгодонской Каменск-Шахтинский Новочеркасский Новошахтинский Сальский Таганрогский Шахтинский Шолоховский Наши услуги.

Высшая квалификационная категория. Стаж работы 18 лет. Диагностика и лечение кожных заболеваний, половых инфекций. Кабинет анонимного обследования и лечения граждан. Ростов — на — Дону, ул. Врач-дерматовенеролог, врач-косметолог. Стаж работы 17 лет. Косметологические услуги г. Ростов-на-Дону, ул. Баумана, 70 Врач-дерматовенеролог высшей квалификационной категории, кандидат медицинских наук.

Стаж работы 14 лет. Баумана, 70 Врач-методист, врач-дерматовенеролог, «Отличник здравоохранения». Стаж работы 41 год. Диагностика и лечение кожных заболеваний, половых инфекций г. Баумана, 70 Врач-дерматовенеролог. Стаж работы 6 лет. Детская дерматология. Баумана, 70 Врач-акушер-гинеколог высшей квалификационной категории.

Стаж работы 24 года. Диагностика, лечение и профилактика женской половой сферы, инфекций передаваемых половым путем, нарушений менструального цикла, бесплодие. Баумана, 70 Врач-дерматовенеролог первой квалификационной категории, кандидат медицинских наук.

О заразных болезнях, общих для человека и животных.

Стригущий лишай

Стаж работы 15 лет. Баумана, 70 Врач-дерматовенеролог высшей квалификационной категории. Стаж работы 28 лет. Лечение кожных заболеваний, половых инфекций. Стаж работы 26 лет. Баумана, 70 Врач-дерматовенеролог первой квалификационной категории.

Стаж работы 11 лет. Стаж работы 12 лет. Пацаева, 1 Врач-дерматовенеролог. Стаж работы 4 года. Ростов-на-Дону ул. Стаж работы 8 лет. Пацаева, 1 Заведующая отделением — врач-физиотерапевт отделения физиотерапевтических методов лечения. Стаж работы 29 лет. Стаж работы 5 лет. Территориальный фонд обязательного медицинского страхования Ростовской области. Федеральная служба по надзору в сфере здравоохранения и социального развития.

Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. Перечень жизненно необходимых и важнейших лекарственных препарптов для медицинского применения на год.

Материалы по переходу на новый порядок применения ККТ. Микозы Микозами называют группу заболеваний, вызываемых патогенными или условно-патогенными микроскопическими грибами.

Эритразма Поражение кожи коринебактериями — приводит к появлению на коже в области крупных складок подмышечных, пахово-бедренных, межпальцевых , в зоне около соска, под молочными железами пятен и очагов шелушения красного, светло-коричневого, кораллово-красного цвета.

Разноцветный или отрубевидный лишай Вызывается патогенным грибом, поражающим только роговой слой эпидермиса. Дерматофитии дерматомикозы Заболевания, вызванные грибами, которые поражают роговой слой эпидермиса, а также ногти и волосы. Дерматофитии разделяют в зависимости от принципа классификации: — по пораженной ткани — эпидермомикозы, трихомикозы, онихомикозы; — по локализации — дерматофития стоп, паховая дерматофития, лица и т.

Наиболее общими характерными признаками дерматофитий служат: — красноватые шелушащиеся пятна с четкими границами — на гладкой коже; — очаги с обломанными волосами в виде «пеньков» или «черных точек» — на волосистой части головы; — тусклые, утолщенные с неровными краями ногтевые пластинки желтого, серого, оранжевого, серо-желтого цвета. Как уже упоминалось, в зависимости от типа поражаемой ткани различают следующие виды дерматофитий: — эпидермофитии — поражается роговой слой эпидермиса; — трихофитии — поражаются роговой слой эпидермиса, волосы; — онихомикозы — поражаются роговые массы ногтей.

дерматомикозов собак и кошек в регионах, выстилающих Северная часть Атлантического океана

Остин Дж. Дерматолог. 2017; 4 (1): 1069.

* Автор для переписки: Piérard GE, Department of Дерматопатология, Университетская клиника Льежа, B-4000 Льеж, Бельгия

Поступила: 29 ноября 2016 г .; Принята к печати: 22 февраля 2017 г .; Опубликован: , 24 февраля 2017 г.

Абстрактные

Среди всего спектра грибов паразитируют лишь несколько десятков видов. на животных, подавляющее большинство из которых являются просто сапрофитными организмами.Поверхностные дерматомикозы кожи включают дерматофитозы и некоторые дрожжевые инфекции. Эти заболевания довольно часто встречаются у людей, собак и кошек. Другие системные микозы встречаются гораздо реже, но включают криптококкоз, споротрихоз, гистоплазмоз и североамериканский бластомикоз. Мы представляем обзор дерматомикозов, общих для собак и кошек в регионах, выстилающих Атлантический океан.

Ключевые слова: Дерматофитии; Кандидоз; Малассезиоз; Криптококкоз; Споротрихоз; Гистоплазмоз; Бластомикоз

Сокращения

M: Microsporum; Т: трихофитон; C: Candida; spp: виды; Cr: Криптококк; B: Blastomyces; H: гистоплазма; Ma: Malassezia

Фон

Северный Атлантический океан граничит с богатыми регионами. у домашних животных, особенно собак и кошек.Эти домашние животные изредка заражаются грибками. Поверхностные дерматомикозы бывают наиболее частые состояния, но системные микозы иногда встретились [1]. Дерматофитозы (стригущий лишай) — это кожные грибковые заболевания. инфекции, число которых в последние годы возросло. Они есть вызванные дерматофитными инфекциями, которые во многом зависят от двух основных род грибов Microsporum (M) и Trichophyton (T) spp. Они представляют собой важные грибковые инфекции, которые атакуют собак и кошки. Хотя Microsporum spp.и Trichophyton spp. инфекции встречаются чаще всего, но обычно не изменяют глобальную здоровье собак и кошек. Они нежелательны, потому что инфекции шерсть, кожа или когти портят внешний вид этих животных. Кроме того, эти грибы потенциально заразны для обоих людей. и животные [2]. Фактически, инфекции Microsporum подлежат уведомлению в в некоторых странах из-за частых тесных контактов между эти животные-компаньоны и люди, особенно между детьми и их домашние животные [3,4].Действительно, дерматофитозы у домашних животных представляют собой основной источник инфекции у людей. Их устранение от животных снижает их влияние на медицину человека.

Заболеваемость Candida spp. и Malassezia spp. похоже, растет среди собак и кошек. Эти дрожжевые инфекции Этому способствует все более широкое применение антибактериальных антибиотиков, цитостатиков, иммунодепрессанты и аналогичные препараты в ветеринарии мелких животных упражняться. Системные микозы, такие как криптококкоз, споротрихоз изредка возникают гистоплазмоз и бластомикоз.

Дерматофитозы иногда не диагностируются из-за их клиническое сходство с другими кожными заболеваниями, в том числе вызванными гормонами расстройства, заражение клещами, экзема, некоторые диетические нарушения, реакции на укусы блох и авитаминозы [5]. И наоборот, набор условий, ведущих к появлению грибка неправильно трактуются как дерматомикозы. Поэтому важно провести дерматоскопию [6] микроскопическое исследование и грибковое посев при подозрении на грибковую инфекцию, чтобы гарантировать правильный диагноз.В некоторых регионах около 10-20% собак и кошки являются бессимптомными носителями патогенных дерматофитов [7]. Они остаются нераскрытыми до тех пор, пока сами их владельцы не разовьют клинические знаки [7]. Ранняя диагностика у этих животных увеличивает шансы быстрое выздоровление и снижение дальнейшего риска распространения инфекции людям [8].

Дерматофитозы

Стригущий лишай, вызываемый Microsporum spp. , Поражает любую волосистую часть человеческая кожа и шерсть животных. Это часто распознается типичным кольцевидные поражения и отсутствие волос длиннее примерно на пару миллиметров над поверхностью кожи.Кошки считаются быть основным резервуаром M. canis [9].

M. canis встречается во всем мире у кошек, собак и других животных. виды животных, а также у человека. Примерно 10-20% кошки и 5% собак поражены M. canis [7]. Его заболеваемость кажется, увеличивается не только у людей, но и у собак и кошки [2,4]. Такой стригущий лишай поражает лошадей, свиней и коз. Это присутствует у различных животных зоопарка, включая обезьян, обезьян, ягуаров и тигров, а также грызуны, такие как кролики, морские свинки, крысы и мыши.М. canis обычен в питомниках кошек [8]. Это влияет на все котят, особенно длинношерстных пород, таких как ангорские и персидские кошки. Некоторые кошки других пород обычно бессимптомные носители гриб [10]. Этот дерматофит очень заразен и легко передаются людям от домашних животных, таких как кошки, собаки и лошади, и наоборот. Таким образом, стригущий лишай Microsporum так опасен в зоопарках, зоотехники и цирки.

Стригущий лишай Microsporum обычно распознается по круглым пятнам на коже, где волосы кажутся сбритыми.Некоторые толстые и присутствуют корковые волосы. У стригущего лишая Microsporum все волоски в пораженные участки видоизменяются и они обламываются. Первоначально ограниченный пятна увеличиваются, и в конечном итоге процесс затрагивает всю поверхность тела. Практически все инфекции Microsporum у кошек вызвано M. canis, и лишь в нескольких случаях это связано с M. gypseum. В клинические поражения чаще всего появляются на голове, ушах, хвосте и передних лапах, но возможно поражение всего тела [7]. Пораженная кожа обычно не зуд, но иногда кошка лижет или чешется.В характерные пятна с выбритым видом, которые развиваются в других кошки — исключение. Наиболее отчетливо проявляются симптомы у котят, в то время как у пожилых кошек часто нет кожных повреждений или есть лишь незначительные и дискретные кожные признаки.

Около трети поражений, вызванных инфекциями Microsporum, являются обнаружен под лампой Вуда. Фактически, инфекции, вызванные M. gypseum не флуоресцируют. Прямое микроскопическое исследование и цианоакрилат На полосках кожи [11-14] выявляются гифы и артроконидии.Грибковые культуры имеют большое значение для диагностики.

Стригущий лишай часто ограничивается несколькими кольцевидными поражениями, которые заживают спонтанно [15]. Волосы начинают расти в области поражения, пока края сохраняют свой бритый вид. Опыт животных зуда нет, и его общее состояние обычно не ухудшается. В увеличивающиеся поражения разнообразны по внешнему виду, и следующие клинические этапов [7] различают:

• Флуоресценция под лампой Вуда, без видимых поражение.
• Гиперпигментированные и слегка приподнятые пятна, с очаговыми алопеция и облысение.
• Поражения с серыми корками, обломками волос и мокнутием эритематозная основа.
• Корки, покрывающие все тело, без алопеции.
• Онихомикоз, когда микоз поражает когти.

После инкубационного периода 10-15 дней ограниченные поражения появляются на пораженном участке шерсти круглыми залысинами около 1-4 см в диаметре. На этих участках волоски обламываются поверхность кожи, создавая подобный тонзуре бритый вид.Центр поражения содержат светлые чешуйки и имеют порошкообразный вид, при этом края образуют эритематозное кольцо. Слияние отдельные поражения образуют нерегулярный полициклический узор, но с контуры оригинальных колец по-прежнему замечательны.

Дерматофитоз, вызываемый T. mentagrophytes, очень заразен для гладкой кожи. T mentagrophytes — космополитический гриб в люди и животные, вызывающие керион у людей и стригущий лишай у различные животные. Это распространено у грызунов, включая кроликов, морских свинок, крысы и мыши, а также дикие животные.Поражает регулярно собак и лошади, но лишь изредка — кошки и редко — крупный рогатый скот и свиньи [7].

T. verrucosum, как правило, имеет только виды животных. как главный водохранилища. Основные животные, зараженные этим грибком или бессимптомными переносчиками спор являются грызуны, независимо от того, они живут в дикой природе (крысы и мыши) или содержатся человеком (кролики, морские свинки, белые крысы и мыши). Люди в сельской местности инфицированы либо при прямом контакте с животными, либо при обращении с зерном, соломой и кормить после предыдущего заражения спорами грызунами.Грибок остается заразным в волосах и чешуях кожи у некоторых длительные периоды.

Остается, что клинический вид поражений, вызванных Стригущий лишай Trichophyton четко не отличается от других дерматофитозы, включая стригущий лишай Microsporum. Поражения, волосы и чешуйки кожи не флуоресцируют под лампой Вуда и вызывают грибковые посевы необходимы для диагностики.

Стригущий лишай Trichophyton у собак обычно развивается как сухой дерматофитоз. Однако начальный этап характеризуется пузырьки и пустулы с коркой и шелушением.Несколько здоровых внутри залысин волоски остаются рассредоточенными. Сайты пристрастия голова, конечности и шея, откуда грибок распространяется на другие части тела. Воспалительные высыпания округлой формы. и эритематозный, с опухшей каймой и твердым покровом. в генерализованная форма, преобладают сухие чешуйчатые диффузные поражения. В большей степени развитые поражения, воспаленные поражения сливаются в более крупные участки покрыты рыхлой чешуей. Возникают местные инфекции ногтей, а также клинически нечеткие и нечеткие формы.Зуд не связан с это состояние. Стригущий лишай трихофитона у кошек в основном влияет на голова, шея и передняя часть груди с подобными чесотке или асбестоподобным корочки, прочно прилегающие к коже.

Дрожжевые инфекции

Кандидоз

Кандидоз — грибковая инфекция слизистой оболочки, кожи, органов пищеварения. дуэт, а иногда и различные другие органы собак, кошек, а также телята, птицы, жеребята, поросята и человек. Обычно это вызвано дрожжи C. albicans, тогда как другие Candida spp.(C tropicalis и C krusei) менее распространены или менее патогенны. Кандидоз встречается повсеместно Мир. Факторами предрасположенности у людей и домашних животных являются: разноплановый: современный образ жизни, интенсивное животноводство, длительное использование лекарств (таких как кортикоиды, антибактериальные препараты широкого спектра антибиотики, трихомонадициды, иммунодепрессанты, цитостатики и контрацептивы) и облучения.

C. albicans — это организм от круглой до овальной формы, обитающий на слизистой оболочке. оболочки ротовой полости и в желудочно-кишечном тракте теплокровных животные.Его биотоп — пищеварительная система изо рта. к анальному отверстию как у людей, так и у животных. Однако он также встречается в в местах, где он не является родным, например на коже и слизистой оболочке влагалища. C. albicans редко встречается в окружающей среде как свободноживущий организм. В нормальных условиях и при отсутствии предрасполагающих факторов C. albicans не является высокопатогенным микроорганизмом при условии, что его количество остается ограничено. Инфекция распространяется на детенышей через фекалии матери. или слюна.

Candida spp.присутствует на здоровых слизистых оболочках пищеварительный тракт как у человека, так и у животных. Однако изоляция несколько колоний Candida из мокроты или кала не имеют патологических значимость. Необходимо количественно оценить состояние и выяснить количество микроорганизмов, проживающих в полости рта или мокроте. Это необходимо установить, присутствует ли мицелий или нет. Candida инфекция присутствует только в том случае, если дрожжевые организмы присутствуют в больших числа и если мицелий присутствует in vivo.

Кандидоз поражает многие органы человека и животных в разные презентации. В зоопарке животные и звери в дикой природе, инфекции возникают как внутри, так и вне пищеварительной системы, областей которые постоянно влажные, особенно восприимчивы к инфекции [7]. Дыхательная система поражается редко.

В практике мелких животных C. albicans встречается нечасто. столкнулся. Организм преимущественно поражает слизистые. мембраны и некоторые участки кожи, влажные или смягченные.В слизистые оболочки обычно становятся толстыми и непрозрачными. шерсть с молочным или творожным псевдомембранным оттенком. В место воспалено, слизистая оболочка эритематозная, эпителиальные клетки пролить. Это состояние позволяет дрожжам глубже проникать в ткани. Поражения полости рта состоят из белых или серых корок, которые имеют тенденцию к слияние в прямые полосы, окруженные воспаленной слизистой оболочкой. На коже обычно наблюдается фолликулит, поражения влажные и эритематозный, с эродированными участками.Присутствуют пузырьки и папулы. покрыты белыми, иногда коричневатыми корочками. Кожный Поражения обычно вторичны по отношению к оральным, анальным или вагинальным формам. Вагинальный кандидод обычно характеризуется белым или кремовым оттенком. выделения и белый налет на стенках влагалища. Кандидоз наблюдается в наружном ухе и эпидермисе, граничащем с ногтем или коготь (перионикс).

C. albicans часто размножается почкованием. Обнаружение мицелий и дрожжи in vivo — обычная находка, особенно когда вовлечено активное поражение [11,14].Соскоб с тканей или мазки мокроты или кала удобно подвергать микроскопическому исследованию. исследования либо непосредственно в воде, либо после очистки образца в растворе гидроксида калия. Положительный образец показывает небольшие, круглые или овальные, тонкостенные дрожжеподобные клетки диаметром 2-4 мкм и гифы с зарождающимися дрожжевыми клетками. Окраска по Граму дает глубокий фиолетовый цвет дрожжам.

Посев грибов и молекулярное типирование проводят для определить дрожжи. C. albicans растет на агаре Сабуро, но использование селективной среды, такой как среда Никерсона, удобна.Агар Сабуро показывает колонии Candida уже через 24-28 ч. тогда как дерматофиты требуют инкубации не менее 8-20 дней. С. albicans растет как при комнатной температуре, так и при 37 ° C. Его колонии неотличимы от других Candida spp. и другие дрожжи невооруженным глазом.

Малассезиоз

Малассезиоз вызывается Malassezia (Ma) spp. У людей эти микроорганизм spp. встречаются в основном в областях, богатых высоким плотность сальных желез [16]. У собак и кошек они обычно представить уши и кожу.Они вызывают наружный отит, потерю волос, и шелушение кожи между щетинистыми волосками [7].

Ma spp. выглядят как маленькие овальные или круглые липофильные дрожжи, которые размножаются однополярным почкованием. Дрожжи присутствуют на поверхности кожи в теплокровные животные, в том числе собаки и кошки. Он хорошо адаптирован своему хозяину, что он не встречался в других условиях. Это представляет собой липофильный условно-патогенный грибок, который становится патогенным только при наличии некоторых предрасполагающих факторов. В случае уха воспаление, смешанные инфекции с грамположительными бактериями, такими как Стафилококки и Streptococci spp., а также с другими типами дрожжей, довольно распространены.

Ma pachydermatis в ухе — это сапрофит, который быстро превращается патогенны при определенных условиях [16]. Это не обычный сингл микроорганизм, присутствующий в наружном отите, но при смешанных инфекциях с грамположительными бактериями и другими дрожжами часто встречаются при воспалениях ушей. Ma.spp. проникают в волосяной фолликул, вызывая потеря волос. Обычно он присутствует в кожных складках. Dermatis, вызываемый Ma pachydermatis, в основном встречается на брюшной полости животных.В в острых случаях развиваются эритематозные высыпания с последующей пигментацией. Гиперкератоз с шелушением формируется в хронической стадии. В состояние всегда сопровождается сильным зудом. Такие поражения делают не реагируют на кортикостероиды или антибактериальные антибиотики, но они излечиваются антимикотиками.

Расположение инфекции у собаки часто указывает на малассезиоз. Другой признак — темно-коричневый оттенок ушной серы. Диагноз подтверждается прямым микроскопическим исследованием ушной серы или чешуек на коже, и подвергнув их культивированию грибков.Ma pachydermatis культивируется на агаре Сабуро, содержащем циклогексимид. Росту грибков способствует инкубация при 37 ° C. Определенные штаммы Ma pachydermatis, обнаруженные у собак, действуют медленно и трудно выращивать [7].

Микроскопическое исследование поражений или грибковых культур выявляет характерные дрожжевые клетки овальной или бутылочной формы с почкованием [17]. Группы ячеек овальной или бутылочной формы диаметром 2-4 мкм. наблюдаются. Размножается гриб однополярным почкованием. Чистота между материнской и дочерней клеткой образуется широкая перегородка перед бутон выпущен.

Системные микозы

Глубокие или системные микозы — серьезные заболевания, вызываемые различными грибки проникают в подкожные ткани и становятся системными. Растет беспокойство по поводу роста числа таких инфекций. у животных [7]. Это увеличение частично связано с улучшением диагностики. методы.

Криптококкоз: Криптококкоз — подострый, иногда хронический микоз, встречающийся у людей и домашних животных включая собак, кошек, крупный рогатый скот и лошадей. Это вызвано криптококком. neoformans [18-20].

Криптококкоз распространен во всем мире, но встречается чаще. в тропиках, чем в умеренном климате, где встречается только спорадически. Cr. neoformans — эктосапрофитные дрожжи с древесиной в качестве природный биотоп. Развивается в экскрементах птиц, особенно голуби и вольеры, но сами птицы болеют редко. Конидии выживают в птичьем урожае и рассеиваются с фекалиями. Они вдыхают пыль и попадают в легкие, где вызывают некоторые местные реакции, переходя в инфекцию всякий раз, когда иммунная система хозяина нарушена или когда другие предрасполагающие факторы присутствуют [7].Споры могут попасть в организм человека или животного. тело через кожные раны или травмы. Рекомендуется избегать любой контакт с инфицированными животными или соблюдение соответствующих профилактических меры. Криптококкоз поражает в основном животных с ограниченными возможностями. иммунная система [7]. Клинический аспект не является специфическим. Диагноз затрудняется другими расстройствами, которые присутствуют одновременно, особенно при генерализованных формах криптококкоза.

Грибок поражает мозг, мозговые оболочки и околоносовые органы. пазухи, вызывая нарушение координации, вращаясь вокруг вращение головы, изменения в поведении, паралич и поток выделения из носа.Скелетная система часто изменяется, и артрит развивается. На вскрытии обнаружено слизисто-гнойное воспаление придаточные пазухи носа и носовые полости, а также мелкие гранулы в мозг и мозговые оболочки. Подкожные гранулемы развиваются вокруг уши, на лице и на ногах.

Криптококкоз чаще встречается у кошек, чем у собак. Кошки с ослабленный клеточный иммунитет (например, после лейкемии кошек) восприимчивы. Криптококкоз подозревают у пожилых кошек с хронические выделения из носа или глаз, слепые, нарушение координации движений, и у вас жар, отек носа или глотки кашель и кашель.Вдыхаемые клетки криптококка присутствуют в опухолевидные поражения горла. Инфекция прогрессирует до полости носа и полость черепа при поражении зрительного нерва, приводит к слепоте. В целом же у кошек болезнь протекает. ограничивается легкими и верхними дыхательными путями. Подкожный иногда присутствуют гранулематозные опухолевидные опухоли; эти очаги поражения заполнены студенистым экссудатом.

Криптококкоз подозревают, если у собаки или кошки необъяснимое респираторное или нервное расстройство или гранулематозное нагноение кожных высыпаний.Биопсии берут на микроскопические экзамены. Cr. neoformans выглядит круглым, как овальные дрожжевые клетки, с толстой капсулой диаметром 5-20 мкм, бутонизация необязательный. Грибковые капсулы, присутствующие в свежих препаратах: удобно окрашивается тушью и окрашивает в красный цвет муцикармином. Грибок растет на агаре Сабуро, содержащем антибактериальный антибиотики, но, конечно, не циклогексимид, потому что Cr. неоформанс очень чувствителен к этому препарату. Культуру инкубируют от 25 до 37 ° С.

Споротрихоз: Споротрихоз обычно представляет собой подкожный микоз. с локализованной, распространенной и системной локализацией в обоих люди и животные [7]. Инкубационный период длится 3-21 день, или еще дольше. Клинические признаки различаются в зависимости от продолжительности беспорядок. Безболезненная реакция начинается с воспаления, а гнойная. абсцессы. Есть несколько твердых сферических узелков, откуда болезнь распространяется по лимфатическим сосудам. При споротрихозе становится хроническим, в представлении видны структуры, напоминающие эпителиоидные клетки и гранулемы.Распространенная форма больше часто встречается у собак и кошек. При некожной форме собака, поражаются печень и легкие.

Кожные узелки должны быть подвергнуты гистопатологии и микологическое исследование на Sporothrix. У человека микроскопические исследование на паразитарную форму в гное редко дает полезные Информация. Однако после окрашивания по Гомори-Грокотту у кошек и собаки, сигарообразные или круглые дрожжевые клетки, а также звездчатые формы, становятся видимыми [7].Гифы не наблюдаются, кроме грибковой культуры. осуществляют. Последнее выполняется на агаре Сабуро, содержащем оба антибиотика и циклогексимид.

Гистоплазмоз: Гистоплазмоз — системное грибковое заболевание. поражающие людей и животных [21-23]. Это вызвано диморфным грибы рода Histoplasma. H. capsulatum отвечает за классический или американский гистоплазмоз. Напротив, H. duboisii вызывает Африканский гистоплазмоз и H. farciminosum поражают в основном лошади.У собак и кошек гистоплазмоз не следует в целом характерное патологическое течение, а скорее хроническое кашель, дизентерия, исхудание и легочные узелки представляют типичные проявления.

Гистоплазмоз является эндемическим заболеванием преимущественно в долине Миссисипи. Однако случаи были зарегистрированы и в других странах [7]. В Европе, он был описан в Италии и Румынии, а в других местах заболевание связано с завозными случаями. В эндемичных районах H. capsulatum живет как почвенный сапрофит, особенно там, где накапливаются фекалии животных, такие как курятники, голубятни, места, где птицы гнездятся и спят в городские парки и пещеры, населенные летучими мышами. Заражение происходит при пыль, содержащая споры, попадает в дыхательные пути или загрязняет небольшие раны или травмы. Помимо людей и собак, заражение встречается у кошек, крупного рогатого скота, лошадей, крыс и мышей, но гистоплазмоз не является проблемой для этих разновидность. При обращении с инфицированным материалом требуется особая осторожность. или культуры Histoplasma spp.

Гистоплазмоз легких первичный и генерализованный гистоплазмоз встречается у собак, кошек, крупного рогатого скота, лошадей, а также у грызуны, живущие в дикой природе. Острый гистоплазмоз практически отсутствует. всегда со смертельным исходом через несколько недель [7].Собаки до трех лет особенно подвержены признакам загрязнения. Симптомы и патологические изменения, вызванные гистоплазмозом легких напоминают те, которые наблюдаются при туберкулезе. У собак есть стойкое хронический кашель, дизентерия или и то, и другое. Глубокий сухой кашель связан с увеличенные бронхиальные лимфатические узлы и легочные узелки. Подобно туберкулезу, гистоплазмоз развивает «первичный комплекс». В пораженных тканях присутствуют казеозные и кальцинированные изменения.Дизентерия возникает из-за изъязвления слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта. Другие клинические проявления включают анорексию, потерю веса, рвота, кожные язвы, уплотнения в подкожных тканях, нерегулярные лихорадка и увеличение висцеральных лимфатических узлов. Пальпация живота часто выявляет увеличение брыжеечных лимфатических узлов. Изъязвление полости рта слизистая оболочка и увеличенные миндалины иногда присутствуют.

В эндемичных районах следует подозревать гистоплазмоз, особенно в молодые собаки с хроническим кашлем и дизентерией.Рентген грудной клетки выявляет увеличенные бронхиальные лимфатические узлы и узелки. Последние различаются от гранулематозно-фиброзных очагов диаметром 2-5 мм до милиарного кальцинаты. Бугорки не кальцифицируются при туберкулезе собак. В предполагаемый диагноз подтверждается микроскопическими исследованиями и грибковые культуры, потому что гистоплазмоз напоминает нокардиоз и кокцидиоидомикоз. Гистопатологическое исследование — ценная помощь для постановки правильного диагноза.

Североамериканский бластомикоз: Североамериканский бластомикоз это системная грибковая инфекция, вызываемая Blastomyces dermatitidis.Заболевание встречается у людей и собак, но только в исключительных случаях. в кошке [24-29]. Это грибковое заболевание особенно эндемично в восточная часть США. Кроме того, об этом особенно сообщается в Африке. Однако в Западной Европе это ограничивается импортными животными. Бластомикоз — это в основном заболевание молодых собак в возрасте около двух лет. кобелей вовлекают легче, чем сук [7]. Они есть инфицированы в результате ингаляционных конидий, растущих в виде сапрофитов в почва и аналогичные земли.Редко удавалось изолировать возбудители образуют почву, хотя случаи у людей и животных не сообщалось. Бластомикоз не передается между людьми и животными, но инфекция передается от окружение. У хозяина с температурой тела 37oC организм присутствует в дрожжевой фазе с единственной почкой, образовавшейся на материнская ячейка по широкому основанию.

Вдыхаемые конидии B. dermatitis переходят в альвеолы, где они фагоцитируются.Они превращаются в паразитических почкующихся дрожжей. клетки, и образуются местные легочные поражения. Болезнь распространяется к другим органам по лимфатическому пути. Вторичные инфекции, приводящие к коже, глазам и костям, иногда возникают, в зависимости от иммунной устойчивости хозяина. Клинические проявления остаются расплывчатые, включая потерю веса, одышку, бронхиальные хрипы и лихорадку.

Страна происхождения ввезенного животного, его возраст, клиническое состояние. признаки и рентгеновский аспект позволяют предположить бластомикоз.Диагноз в основном основывается на цитологических и гистопатологических данных. исследования, совмещенные с грибковой культурой. Это подтверждается прямое микроскопическое исследование гноя, мочевого осадка или материала кашля или промывание трахеи. Б. dermatitidis легко отличить от других дрожжей по размеру размером 8-15 мкм, хрупкой клеточной стенкой и широкими униполярными зачатками [7].

Заключение

Диагностика дерматомикозов растет на Западе, как у людей и домашних животных.Домашние животные играют важную роль в качестве резервуар зоонозов. У домашних животных клиническая причина дерматомикозов происходит по той же схеме, что и инфицирование людей [7]. С человеческая инфекция, клиническая причина часто бывает более серьезной в люди с ослабленным иммунитетом [30,31].

Благодарность

Авторы ценят прекрасную секретарскую помощь Magali Caes.

Список литературы

1. День MJ. Инфекции, связанные с домашними животными.Я семейный врач. 2016; 94: 794-802.
2. Piérard GE. Дерматомикозы, вызванные дерматофитами. Преподобный Мед Льеж. 2016; 71: 147-153.
3. Пьерар-Франшимон С., Херманн Дж., Коллетт С., Пьерар Дж., Кватресо П. Стригущий лишай у человека и собаки. Acta Clin Belg. 2008; 64: 322-324.
4. Ноэль Ф, Пьерар-Франшимон С., Пьерар Дж. Э., Куатресо П. Фунги, домашние животные и их владельцы. Rev médicale Lie`ge. 2011; 66: 589-595.
5. Пин Д. Недерматофитные дерматозы, имитирующие дерматофитозы у животных.Микопатология. 2017; 182: 113-126.
6. Scarampella F, Zanna G, Peano A, Fabbri E, Tosti A. Дермоскопические особенности у 12 кошек с дерматофитозом и у 12 кошек с самоиндуцированной алопецией, вызванной другими причинами: обсервационное описательное исследование. Vet Dermatol. 2015; 26: 282-e63.
7. Ван Катсем Дж., Рошетт Ф. Микозы у домашних животных. Janssen Research. Бирс, Бельгия. 1991: 226.
8. Ньюбери С., Мориелло К.А. Дерматофитоз кошек: шаги по расследованию предполагаемой вспышки болезни в приюте.J Feline Med Surg. 2014; 16: 407-418.
9. Mignon B, Swinnen M, Bouchara JP, Hofinger M, Nikkels A, Piérard GE и др. Очистка и характеристика кератинолитической субтилизин-подобной сериновой протеазы 315 кДа из Microsporum canis и доказательства ее секреции у естественно инфицированных кошек. Med Mycol. 1998; 36: 395-404.
10. Bieganska M, Dardzinska W, Dworecka-Kaszak B. Колонизация грибами — дополнительный фактор риска для больных собак и кошек? Ann parasitol. 2014; 60: 139-146.
11. Piérard-Franchimont C, Piérard GE. Удаление кожных покровов при диагностике и мониторинге воспалительных, ксеротических и опухолевых заболеваний. Pediatr Dermatol. 1985; 2: 180-184.
12. Piérard-Franchimont C, Piérard GE. Оценка старения и актинических повреждений путем удаления цианоакрилата с поверхности кожи. Am J Dermatopathol. 1987; 9: 500-509.
13. Katz HI. Сенсорный отпечаток на поверхности кожи: обзор показаний и использования. Adv Dermatol. 1990; 5: 197-213.
14. Piérard GE, Piérard-Franchimont C, Paquet P, Hermanns-Lê T, Radermacher J, Delvenne P.Удаление цианоакрилата с поверхности кожи и появление 3S-Biokit в тропической дерматологии: взгляд из Льежа. Sci W J. 2014; 2014: 462634.
15. Proverbio D, Perego R, Spada E, Bagnagatti de Giorgi G, Della Pepa A, Ferro E. Исследование дерматофитов у бродячих кошек с поражениями кожи и без них в Северной Италии. Vet Med Int. 2014; 2014: 565470.
16. Czyzewska U, Siemieniuk M, Pyrkowska A, Nowakiewicz A, Bieganska M, Dabrowska I. Сравнение липидных профилей штаммов Malassezia pachydermatis, выделенных от собак с наружным отитом и без клинических симптомов заболевания.Микозы. 2016; 59: 20-27.
17. Piérard GE, Xhauflaire-Uhoda E, Piérard-Franchimont C. Ключевая роль корнеоцитов в питироспорозах. Дерматология. 2006; 212: 23-26.
18. Vorathavorn VI, Sykes JE, Feldman DG. Криптококкоз как развивающийся системный микоз у собак. J Vet Emerg Crit Care (Сан-Антонио). 2013; 23: 489-497.
19. Tangeman L, Davignon D, Patel R, Littman M. Абдоминальный криптококкоз у двух собак: диагностика и лечение. J Am Anim Hosp Assoc. 2015; 51: 107-113.
20. Headley SA, Mota FCD, Lindsay S, de Oliveira LM, Medeiros AA, Pretto-Giordano LG. Cryptococcus neoformans var. grubii-индуцированный артрит с энцефалитом распространения у собак и обзор опубликованной литературы. Микопатология. 2016; 181: 595-601.
21. Brömel C, Sykes JE. Гистоплазмоз у собак и кошек. Clin Tech Small Anim Pract. 2005; 20: 227-232.
22. Лин Блаче Дж, Райан К., Арсено К. Гистоплазмоз. Compend Contin Educ Vet. 2011; 33: E1-10.
23. Аулах ХК, Аулах К.С., Троя ГК.Гистоплазмоз кошек: ретроспективное исследование 22 случаев (1986-2009). J Am Anim Hosp Assoc. 2012; 48: 182-187.
24. Лестер Р.С., ДеКовен Дж. Г., Кейн Дж., Симор А. Э., Крайден С., Саммербелл Р. Новые случаи бластомикоза в Торонто, Онтарио. CMAJ. 2000; 163: 1309-1312.
25. Brömel C, Sykes JE. Эпидемиология, диагностика и лечение бластомикоза у собак и кошек. Clin Tech Small Anim Pract. 2005; 20: 233-239.
26. Гилор С., Грейвс Т.К., Баргер А.М., О’Делл-Андерсон К.Клинические аспекты естественной инфекции Blastomyces dermatitidis у кошек: 8 случаев (1991-2005). J Am Vet Med Assoc. 2006; 229: 96-99.
27. Вернер А., Нортон Ф. Бластомикоз. Compend Contin Educ Vet. 2011; 33: E1-4.
28. Davies JL, Epp T, Burgess HJ. Распространенность и географическое распространение бластомикоза собак и кошек в канадских прериях. Can Vet J. 2013; 54: 753-760.
29. Андерсон Дж. Л., Дикман Дж. Л., Рид К. Д., Мис Дж. К.. Бластомикоз собак в Висконсине: обзор ветеринарной практики мелких животных.Med Mycol. 2014; 52: 774-779.
30. Nir-Paz R, Elinav H, Pierard GE, Walker D, Maly A, Shapiro M. Глубокая инфекция Trichophyton rubrum у пациента с ослабленным иммунитетом. J Clin Microbiol. 2003; 41: 5298-5301.
31. Piérard GE, Piérard-Franchimont C, Hermanns-Le T, Hermanns JF, Delvenne P. Рост дерматофитов при дерматофитозах голой кожи у хозяев с ослабленным иммунитетом. J Med Diagn Meth. 2015; 4: 1000-1186.

Стригущий лишай (дерматофитоз) — Медицинская программа приюта в Мэдисоне Университета Висконсина

Содержание:

Введение
Диагностика стригущего лишая
Лечение стригущего лишая
Проверка излечения
Предотвращение распространения стригущего лишая в приюте
Лечение стригущего лишая в частном или приемном доме
Краткое изложение профилактики и лечения

Введение

Стригущий лишай у отдельного животного является неприятностью; однако стригущий лишай в приюте для животных может привести к совершенно неуправляемым вспышкам, тысячам долларов на диагностику и медицинские расходы, возможности распространения среди усыновителей и персонала, а также к недопустимому удару по статусу приюта в обществе. Жизненно важно иметь последовательную и эффективную стратегию профилактики и лечения этого заболевания.

Что такое стригущий лишай?

Стригущий лишай, или «дерматофитоз», представляет собой грибковую инфекцию, поражающую кожу, волосы и иногда ногти животных (и людей). Три вида стригущего лишая чаще всего поражают кошек и собак:

У кого стригущий лишай?

Виды дерматофитов, поражающие кошек и собак, могут передаваться между этими двумя видами, а также между людьми и другими млекопитающими.

Факторы, повышающие риск стригущего лишая

• Возраст — Восприимчивы животные любого возраста, но молодые животные (<1 года) и гериатрические животные подвержены наибольшему риску
• Виды и породы — Кошки подвержены большему риску, чем собаки. Персидские кошки и йоркширские терьеры относятся к группе относительно высокого риска, как и длинношерстные кошки в целом.
• Иммунный статус — Состояния, которые ставят под угрозу иммунную систему, такие как FIV, FeLV, беременность / лактация, недоедание, противовоспалительные препараты, рак или стресс
• Ранее существовавшие условия — Животные с уже существующими условиями, которые затрудняют уход (например,грамм. URI) или целостность кожи (например, аллергия на блох, чрезмерный уход, внешние паразиты) подвергаются повышенному риску

Как передается стригущий лишай?

M. canis чаще всего передается в результате контакта с инфицированным животным или загрязненной окружающей средой, и поэтому с наибольшей вероятностью может стать серьезной проблемой в приюте. Считается, что T. mentagrophytes заразился в основном в результате контакта с гнездами грызунов, а M. gypseum — из загрязненной почвы, хотя существует возможность передачи от животного к животному в загрязненной среде.

Стригущий лишай очень устойчив в окружающей среде. Стригущий лишай может сохраняться на любой поверхности и может заразить животных, содержащихся в загрязненной среде, спустя месяцы и даже годы. (См. Информацию об экологической очистке, чтобы узнать больше об определении источников значительного загрязнения.)

Стригущий лишай может легко передаваться через инструменты для ухода, зараженные игрушки и постельные принадлежности, а также через одежду и руки людей. В природе инкубационный период стригущего лишая составляет от 4 дней до 4 недель.Стригущий лишай может быть обнаружен на шерсти животных из зараженной среды, даже если само животное не проявляет никаких признаков.

Внешний вид

Название «стригущий лишай» происходит от наиболее частого появления круглой области выпадения и шелушения волос. Чаще всего встречаются морда, уши, ступни и хвост. Однако стригущий лишай может проявляться по-разному, включая выпадение волос на больших участках с корками и экссудатом или без них. Стригущий лишай также может вызвать инфицирование ногтей на ногах и ногтевого ложа.Поражения стригущего лишая могут быть или не быть зудящими (зудящими).

Существуют и другие возможные причины всех типов поражений, описанных выше, поэтому окончательный диагноз, основанный только на внешнем виде, невозможен. Не все области алопеции вызваны стригущим лишаем. Обычно также наблюдаются признаки воспаления — покраснение кожи, отек, тепло на ощупь, зуд или болезненность. В исследовании, проведенном в приюте, большинство кошек с кожными поражениями не были инфицированы стригущим лишаем, а у значительного числа кошек без явно выраженных повреждений посевы были положительными.Следовательно, в идеале для подтверждения или исключения стригущего лишая у всех кошек, особенно у тех, кто подвержен высокому риску из-за наличия кожных заболеваний, породы или риска воздействия (см. Ниже), следует использовать посев на грибки (см. Ниже). демодекозная чесотка и стафилококковый фолликулит.

Диагностика стригущего лишая

Точный диагноз стригущего лишая очень важен: последствия ложноположительного теста могут быть серьезными для отдельного диагностированного животного, особенно в учреждениях, которые усыпляют животных с положительным стригущим лишаем.Последствия ложноотрицательного результата также значительны, так как он может позволить инфицированному человеку распространить стригущий лишай в учреждении или в приемном или приемном доме. К сожалению, не существует быстрого и надежного теста для диагностики стригущего лишая. Есть способы подтвердить его присутствие, но нет окончательного способа подтвердить его отсутствие, кроме тщательного посева грибков и микроскопического исследования.

Если по практическим соображениям необходимо сделать «наилучшее предположение» без проведения грибковой культуры, анамнез животного, клинические признаки и результаты обследования с помощью лампы Вуда следует рассматривать вместе.Например, классическое кольцевидное поражение у котенка, особенно если поражено несколько членов помета, с большой вероятностью может быть стригущим лишаем, даже если результаты лампы Вуда отрицательны. С другой стороны, стригущий лишай редко встречается у взрослых собак, поэтому даже подозрительное поражение с большей вероятностью будет иметь другую причину, если только не имеется сильно подозрительного анамнеза (то есть известного недавнего воздействия, эндемичной области).

Недавно (март 2015 г.) IDEXX Laboratories представила методику Ringworm ReaPCR ™ для диагностики стригущего лишая. Исходя из нашего опыта, у всех подозреваемых животных все же необходимо провести посев для подтверждения наличия или отсутствия грибка.

Лампа Вуда

Лампа Вуда — это ультрафиолетовый свет с определенной длиной волны света, который вызывает флуоресценцию некоторых штаммов M. canis (наиболее распространенного вида стригущего лишая у кошек). Лампа Вуда при правильном использовании может быть полезным и экономичным инструментом для проверки. Традиционно сообщалось, что 50% штаммов M. canis будут флуоресцировать под лампой Вуда.Однако некоторые люди сообщают, что более 90% из штаммов M. canis будут флуоресцировать. Яркая яблочно-зеленая флуоресценция, покрывающая стержни волос, явно указывает на инфекцию и требует изоляции и культивирования грибов.

Ложноположительные результаты лампы Вуда — обычное дело, особенно когда тест проводится нетренированным или неопытным персоналом. Некоторые лекарства, в том числе доксициклин, клавамокс и глазные мази, будут флуоресцировать, если они попадут на шерсть. Кожный жир может светиться желтым, и его не следует принимать за инфекцию стригущего лишая.

Флуоресценцию, вызванную инфекцией M. canis , можно отличить от флуоресценции, вызванной загрязнителями, по тому факту, что стригущий лишай не может быть легко счищен щеткой, а сами стержни волос будут флуоресцировать характерным зеленым цветом яблока, а не большой участок кожи, как это было бы быть замеченным с лекарством в шерсти. Наблюдение за известными поражениями поможет развить навыки распознавания истинной флуоресценции.

Чтобы получить максимальную пользу от этого теста, важно правильно использовать правильное оборудование:

• Следует использовать настоящую лампу Вуда, а не обычную УФ-лампу, поскольку лампы Вуда флуоресцируют на определенной длине волны (360 нм).
• Подключаемый модуль, а не модель батареи, идеален, так как более сильный свет с большей вероятностью вызовет флуоресценцию.
• Выполните исследование в полностью темной комнате и дайте глазам привыкнуть перед выполнением исследования
• Держите лампу на расстоянии не более 4-10 см от животного
• Внимательно осмотрите животное, особенно на морду, лапы, живот и внутри ушей
• Ниже приведено отличное видео о том, как пройти тщательный экзамен по лампе Вуда .

Хотя отсутствие флуоресценции лампы Вуда никоим образом не исключает заражения стригущим лишаем, положительный результат является хорошим индикатором, по крайней мере, для изоляции животного до определения результатов культивирования грибка.

Прямое микроскопическое исследование

Положительные результаты исследования лампы Вуда и прямое микроскопическое исследование могут диагностировать стригущий лишай, но отрицательные результаты не исключают этого. Прямое микроскопическое исследование используется для подтверждения результатов испытаний ламп Вуда и может быть особенно полезно, если результаты испытаний ламп Вуда неоднозначны. Результаты можно улучшить с помощью практики.

Положительные волосы лампы

Individual Вуда можно осторожно выдернуть из волосяного фолликула и поместить в каплю минерального масла для непосредственного исследования. Некоторые люди рекомендуют очистить образец от кератина, суспендировав его в 10-20% КОН или хлорфенолаке перед исследованием, но мы не сочли этот шаг необходимым, и эти вещества разъедают линзы микроскопов.

Зараженные волосы кажутся опухшими, потрепанными, неправильными или нечеткими по очертаниям, а нормальная структура кутикулы, коры и продолговатого мозга теряется.

Распознавание пораженных волос требует практики. Чтобы получить опыт постановки диагноза этим методом, исследуйте известные инфицированные волосы из очага поражения с помощью лампы Вуда в сочетании с результатами посева от того же человека.Сомнительные случаи или противоречивые результаты лампы Вуда и прямого осмотра следует культивировать. Решение о культивировании образцов может зависеть от протокола приюта относительно лечения или эвтаназии животных с положительным стригущим лишаем и уверенности персонала в оценке лампы Вуда и прямом микроскопическом исследовании волос.

Грибковые культуры

Хотя золотым стандартом диагностики стригущего лишая остается положительная идентификация спор, возникших в результате роста грибковой культуры, тест с лампой Вуда и прямое микроскопическое исследование в руках опытного специалиста могут использоваться в качестве подтверждения инфекции. Культивирование грибов остается важным инструментом для получения несогласованных результатов, неопытного персонала, а также для мониторинга лечения и ведения.

Проведение тестирования грибковых культур на месте, где это возможно, по сравнению с отправкой в ​​диагностическую лабораторию, имеет ряд преимуществ. Чтобы правильно управлять вспышкой стригущего лишая, поражающей несколько животных, часто требуется большое количество культур. Посевы следует проводить для оценки риска зараженных кошек, диагностики подозрительных поражений и подтверждения излечения после лечения.Это может быстро стать непомерно высокими расходами, если культивирование не будет рентабельным.

Собственное считывание культур также позволяет быстрее диагностировать положительные результаты, поскольку рост часто происходит в течение недели, что позволяет раньше начать лечение. Количество роста на планшете с культурой может помочь отличить возможных носителей от действительно инфицированных животных.

Приемные родители могут быть проинструктированы о надлежащей технике сбора культур с зубной щетки и могут просто приносить образцы для постоянного наблюдения, а не каждый раз приносить всех инфицированных животных.

Заметки об успешном культивировании стригущего лишая

Пластинчатые культуры легче засеять с помощью зубной щетки, чем узкие банки или скошенные банки. Из них также проще собирать образцы для микроскопического исследования. Чашки, которые объединяют тестовую среду дерматофитов на одной стороне, чтобы дать изменение окраски в красный цвет с большинством видов дерматофитов со средой для быстрого спорулирования или агаром Сабуро с декстрозой, чтобы помочь в микроскопической идентификации колоний на другой стороне, являются идеальными. Таблички можно заказать в Hardy Diagnostics.

Для одиночных поражений:

• Выщипайте большое количество отдельных волосков с помощью кровоостанавливающего зажима или руки в перчатке из подозрительных поражений (если волосы положительные по лампе Вуда, выберите их)
• Плотно прижмите волосы к культуре
• Даже для животных с поражениями может быть предпочтительнее культивирование с помощью зубной щетки, как описано ниже.

Для животных без поражений или мультифокальных поражений (культура зубной щетки):

• Если есть подозрение на заражение шерсти, протрите животное влажной тканью перед посевом.
• Используя зубную щетку из только что открытой упаковки, почистите животное не менее 30 раз, включая вокруг лица, внутри и снаружи ушных раковин, а также вокруг ногтевого ложа.Подозрительные области должны быть последними.
• Если зубные щетки транспортируются до посева культуры, убедитесь, что они не подвергаются воздействию высоких температур (например, в горячей машине), так как это может разрушить споры и привести к ложноотрицательным результатам посева
• При посеве убедитесь, что питательная среда имеет комнатную температуру
• Плотно прижмите зубную щетку к питательной среде, но не так сильно, чтобы питательная среда не разрушилась
• Не забудьте промаркировать образец датой и ID животного
• Поддерживайте культуру при температуре от 75 до 80 градусов по Фаренгейту (если в приюте нет удобного инкубатора, сделайте импровизированный инкубатор, используя лампочку и термометр в закрытом пластиковом контейнере. Поместите в инкубатор емкость с водой, чтобы предотвратить обезвоживание питательной среды.)
• Ежедневно проверяйте посевы для отслеживания роста. В подавляющем большинстве случаев M. canis у необработанных животных вырастет в течение 10 дней, но чашки следует выдерживать 21 день на всякий случай (для роста видов Trichophyton может потребоваться больше времени). Хотя доступны наборы для культивирования, которые, как утверждается, дают результаты менее чем за 10 дней, они не являются надежными.
• Всегда подтверждайте вид микроскопически — некоторые непатогенные грибы невооруженным глазом могут выглядеть как стригущий лишай.У видов стригущего лишая будет развиваться рост колоний одновременно с изменением цвета среды. Кроме того, стригущий лишай имеет характерный белый пушистый вид колонии, тогда как другие виды грибов часто бывают желтыми, зелеными или слизистыми.

Рост M. canis (выявленный при микроскопическом исследовании) на планшете DTM

Идентификатор

Не все дерматофиты окрашивают тестовую среду дерматофитов в красный цвет, поэтому возможны ложноотрицательные результаты. Некоторые другие типы непатогенных грибов могут вызывать красный цвет, поэтому возможны ложные срабатывания.Чтобы точно установить диагноз стригущий лишай, необходимо провести микроскопическое исследование и точно идентифицировать грибок. Культуру на среде с быстрым спорулированием можно исследовать под микроскопом, чтобы точно идентифицировать присутствующий гриб.

Это достигается путем микроскопического исследования «препарирования ленты»:

1. Нанесите каплю красителя лактофенолового синего на предметное стекло
2. Прикрепите липкую сторону куска ленты к подозреваемой колонии
3. Поместите ленту на каплю пятна и исследуйте под микроскопом

Большинство наборов питательных сред поставляется с руководством по микроскопической идентификации.Описания и фотографии для идентификации грибков можно найти в «Дерматологии мелких животных» Мюллера и Кирка, 7-е издание (Сондерс), глава 2, «Методы диагностики».

Лечение стригущего лишая

В большинстве случаев домашние животные спонтанно выздоравливают от стригущего лишая в течение примерно 3 месяцев. Ожидание самолечения — это, безусловно, разумный выбор в семье с одним животным, где нет маленьких детей или взрослых с ослабленным иммунитетом, где заражение не является серьезной проблемой. Однако в условиях приюта или приюта очень желательно более быстрое разрешение.Снижение загрязнения окружающей среды так же важно, как и лечение, направленное на ускорение выздоровления пораженных животных.

Стрижка и бритье

Стрижка кошек с короткой и средней шерстью часто не нужна, и она может усугубить поражение из-за микротравм и механического распространения спор. Тем не менее, стрижка показана для очень длинношерстных кошек и кошек, которые могут быть не в состоянии ухаживать из-за экстерьера (например, персов), одновременной тяжелой заложенности верхних дыхательных путей или спутанной шерсти.Стрижка также может быть полезна для кошек, у которых шерсть становится непослушной после окунания.

Стрижку следует выполнять осторожно с помощью лезвия № 10 — очень осторожно, чтобы не обжечься машинкой для стрижки — и аккуратно утилизировать волосы. Стрижка более близким лезвием вызывает чрезмерную травму и увеличивает вероятность обострения повреждений. Стрижка должна производиться в комнате, которую легко чистить, поскольку она вызывает сильное загрязнение окружающей среды (см. Ниже), а используемые инструменты следует тщательно очищать и использовать только для этой цели, никогда не использовать на здоровых животных (т.е. не используйте хирургические машинки для стригущего лишая кошек!).

Важно носить защитную одежду при работе со стригущим лишаем в приюте, особенно при стрижке. В учреждении с легко очищаемой / дезинфицируемой комнатой для эвтаназии это может быть хорошим местом для стрижки кошек с стригущим лишаем.

Средства для местного применения

Самым важным компонентом лечения населения является местная терапия.

Это очень важно для уменьшения непосредственного и постоянного загрязнения окружающей среды.Лучше всего это достигается с помощью местной терапии, которая стерилизует шерсть и предотвращает дальнейший рост спор, которые могут повторно загрязнить окружающую среду.

Из всех доступных местных методов лечения раствор извести и серы является наиболее экономически эффективным, поскольку он стерилизует шерсть, чтобы предотвратить дальнейший рост стригущего лишая, его относительно легко быстро применить к ряду кошек и было документально подтверждено, что он хорошо работает в условиях приюта. .

Шампунь Miconazole в сочетании с хлоргексидином также может быть эффективным; одного хлоргексидина нет.Раствор энилконазола, хотя, как сообщается, эффективен, недоступен для этого использования в Соединенных Штатах (он регулируется EPA, а не FDA, которое не разрешает использование не по назначению таким же образом). Некоторые доступные в настоящее время местные методы лечения неэффективны или эффективны лишь частично; будьте осторожны при выборе другой обработки, кроме раствора серы извести. Шампуни с хлоргексидином и местные мази для местного применения не обеспечивают эффективной стерилизации шерсти и не обеспечивают остаточную активность против дальнейшего роста. Тербинафин (ламизил) и клотримазол (лотримин) для местного применения не рекомендуются для применения у домашних животных, поскольку они не уменьшают дальнейший рост поражений стригущего лишая.

Шампунь

Pure Oxygen® (шампунь с ускоренной перекисью водорода от Ogena Solutions) может удалить споры стригущего лишая с шерсти. Продолжаются исследования, чтобы определить эффективность шампуня Pure Oxygen® в качестве местного средства от стригущего лишая.

Использование серы в извести:

• Используйте 8% концентрацию (примечание: это 8 унций на галлон теплой воды, что вдвое превышает рекомендуемую концентрацию, указанную на бутылке)
• Применять два раза в неделю на протяжении всего курса лечения
• Безопасно для беременных и кормящих животных, а также котят / щенков старше 2–3 недель
• Протрите соски кормящих мам после местного лечения, согрейте молодняк с помощью нагревательной лампы или нагревательных блоков, если необходимо
• Э-ошейник после этого не нужен
• Не мочить животное заранее
• Рассмотрите возможность использования для нанесения нового садового опрыскивателя : подробности можно найти на веб-странице по лечению дерматофитов Гуманного общества округа Дейн. Обязательно держите конец распылителя близко к коже животного при нанесении.
• С помощью небольшой тряпки или губки нанесите раствор на лицо, нос и уши.
• Использование офтальмологической мази для защиты глаз кошки не рекомендуется, потому что, если раствор попадет в глаз, может быть очень трудно удалить раствор, если он смешан со смазкой. Вместо этого держите глаза под рукой и щедро промывайте, если раствор попадет в кошачий глаз.
• Не промывать животное после нанесения раствора; оберните животное полотенцем и дайте высохнуть

Обратите внимание: физически окунать кошек в известково-серный раствор не рекомендуется, так как это вызывает стресс для кошек (и персонала) и может привести к перекрестному заражению между кошками, которых лечат, если один и тот же раствор известковой серы используется несколько раз. кошки.

Системное лечение

Системное лечение является важным дополнением к местной терапии, особенно в приютах, где время до излечения является важным фактором. Продолжительное пребывание в приюте или приемной семье увеличивает вероятность распространения, использует драгоценное изолированное пространство и может снизить адаптивность пациента, особенно если котятам позволено стареть во время лечения.

Недостатками системного лечения являются относительно высокая стоимость препаратов и возможность развития токсических побочных эффектов.Итраконазол — хороший выбор из-за его продемонстрированной эффективности, относительной безопасности и длительного периода полувыведения из кожи. Мы не рекомендуем комбинированный итраконазол, поскольку неоднократно доказывалось, что он менее эффективен и может привести к неэффективности лечения.

Сообщается также, что

эффективны флуконазол и тербинафин. Гризеофульвин эффективен, но с большей вероятностью, чем итраконазол, вызывает токсические побочные эффекты. По возможности следует избегать применения кетоконазола у кошек, поскольку он может вызвать гепатотоксичность у этого вида.В повторных исследованиях было показано, что луфенурон (программа) неэффективен .

Животные, принимающие любые системные противогрибковые препараты, должны находиться под тщательным наблюдением и тщательно следовать всем инструкциям по применению препаратов. Эти препараты следует избегать беременным животным.

Процедуры, которые не работают

, а не

Несмотря на то, что многие виды лечения, как сообщается, эффективны для отдельных животных, частота самолечения затрудняет оценку этих утверждений в отсутствие подтверждающих научных данных.В условиях популяции неэффективность лечения более очевидна и распространена, и требования к высокоэффективному лечению жесткие. Следующие методы лечения не продемонстрировали свою эффективность в контролируемых исследованиях:

• Луфенурон (программа)
• Кремы и мази для местного применения
• Хлоргексидин в качестве шампуня или дезинфицирующего средства
• Пероксимоносульфат калия (Trifectant) в виде капли

«Натуральные» методы лечения, часто предлагаемые на сайтах с хорошими намерениями, такие как яблочный уксус, кокосовое масло, масло чайного дерева, папайя, чеснок, экстракт семян грейпфрута, коллоидное серебро, бетадин и местный отбеливатель, неэффективны, а некоторые из них домашние средства токсичны для домашних животных.

Импульсная терапия сложна, и ее трудно отслеживать в приюте. Это требует ударной дозы и в конечном итоге не снижает количество лекарства, используемого для лечения. Поэтому пульс-терапия не рекомендуется.

Проверочное лечение

Крайне важно понимать, что животные все еще могут переносить инфекционные грибы даже после того, как признаки полностью исчезли. Животные могут считаться вылеченными после отрицательного результата 3 последовательных еженедельных посева грибов.(Если два раза в неделю используются известковая сера и системный итраконазол, может быть достаточно 2 культур.)

Посев на грибок должен быть получен методом сбора зубной щеткой, начиная с 1 недели лечения. Животные, содержащиеся в загрязненной среде, могут случайно заразиться. Если это вызывает беспокойство, животное следует держать в чистой клетке или комнате в течение 5-10 дней до получения культуры.

Поскольку грибковые культуры требуют около двух недель для подтверждения отрицательных результатов, это означает, что лечение и документирование выздоровления займут как минимум 6-8 недель и может занять до 3-4 месяцев. Содержание и социализация животного в этот период являются чрезвычайно важными факторами при принятии решения о целесообразности лечения в приюте.

Предотвращение распространения стригущего лишая в приюте

В настоящее время нет вакцины, защищающей от стригущего лишая.

Лучшая защита, как и от многих инфекционных заболеваний, — это отличное содержание. Котят, относящихся к группе повышенного риска, следует обследовать с помощью лампы Вуда и внимательно осмотреть их при поступлении и перед размещением в приемных семьях.

Помните, что в некоторых случаях лампа Вуда не обнаруживается. Для районов с высоким уровнем стригущего лишая, всех котят или пометы следует содержать отдельно в легко дезинфицируемом помещении в течение не менее двух недель и наблюдать за тем, как им будет разрешено работать в птичнике (напомним, что инкубационный период составляет от 4 дней до 4 недель. , поэтому этот карантин будет ловить некоторые, но не все случаи).

Определить пораженных животных

1. Тщательно осмотрите всех поступающих животных и всех животных, рассматриваемых для размещения в приемных семьях или группового содержания.Ищите участки с выпадением волос, струпьями или корками, особенно очаговые участки на лице, ушах, ступнях или хвосте
2. Выполните обследование с помощью лампы Вуда для выявления всех подозрительных поражений и всех кошек, рассматриваемых для помещения в групповое жилье или приемных семей. Используйте правильную технику и осознайте ограничения этого исследования (возможны ложноотрицательные результаты)
3. Прямое микроскопическое исследование волос из подозрительных участков. Практикуйте технику и признайте ограничения (возможны ложноотрицательные результаты).
4. Посев на грибок и идентификация под микроскопом во всех случаях, когда требуется окончательный диагноз

Отделить пораженных животных от общей популяции

Изолируйте пораженных или подозреваемых животных и установите протоколы очистки, чтобы предотвратить дальнейшее распространение. Нет необходимости полностью изолировать подозрительных или инфицированных животных в отдельном здании, если начата соответствующая очистка окружающей среды.

• Все поверхности, с которыми контактировали животные с подозрением на стригущий лишай, следует немедленно очистить, а затем продезинфицировать.Сюда входят полы, переноски, транспортные средства и столешницы.
• Четко идентифицируйте подозрительных животных (например, повесьте табличку на их клетке)
• Размещение пораженных и подозреваемых животных по отдельности в клетках, которые можно легко очистить, упростит идентификацию лечения, но во многих случаях преимущества социализации требуют совместного содержания котят или связанных пар в течение периода лечения. После отъема большие пометы следует разделить на несколько групп содержания (по 2-3 на клетку).
• В приемных семьях, содержание в большой клетке для собак или в легко очищаемой комнате, например в ванной, до тех пор, пока не будет завершено не менее двух недель эффективного местного лечения
• В идеале, подозреваемых на стригущий лишай следует держать отдельно от других животных. Если это невозможно, по крайней мере, держите их отдельно от групп высокого риска (котят, беременных мам, кошек с URI)
• Надевайте защитную одежду при работе в помещении для карантина стригущего лишая или при работе с пораженными животными (халат с длинными рукавами, перчатки, бахилы или ботинки, используемые только для этой цели).Выбрасывайте или стирайте защитную одежду ежедневно.
• Дезинфицируйте клетки и все поверхности в комнате два раза в неделю, используя разбавленный отбеливатель (1:32) на чистой поверхности или Accel® (1:16). Чистку пятен следует проводить ежедневно, чтобы свести к минимуму неудобства и снизить стресс у кошек.
• Посуду и другие предметы, которые можно мыть, можно мыть в посудомоечной машине при температуре воды не ниже 43,3 ^o C (110 ^o F)
• Постельное белье следует стирать в случае загрязнения или в дни, когда применяется местное лечение.Не переполняйте стиральную машину, так как это снижает ее способность механически удалять споры стригущего лишая. Белье от стригущего лишая следует стирать отдельно от другого белья. Сушите белье от стригущего лишая отдельно и очищайте фильтры для ворса после каждого использования. Постельное белье или игрушки, которые нельзя стирать, следует выбросить.
• После содержания животного, страдающего стригущим лишаем, тщательно очистите и продезинфицируйте клетку перед использованием клетки для другого животного (см. Протокол ниже).
• Тщательно очистите все участки, которые нельзя продезинфицировать, с помощью влажной швабры или электростатического очистителя, например Swiffer®, а затем пропылесосьте.Выбросьте мешок для пылесоса.

Обеззараживание окружающей среды

Основой дезактивации окружающей среды является выявление, удаление и обработка (если в приюте есть соответствующее жилье / пространство и ресурсы) пораженных животных в сочетании с тщательной механической очисткой. Дезинфекция — важная часть протокола, но она дополняет механическое удаление.

Трижды очистите все поверхности любым хорошим моющим средством и чистой ветошью. После этого механического удаления используйте дезинфицирующее средство.Концентрированный отбеливатель или даже разбавленный в пропорции 1:10 слишком агрессивен для повседневного использования и, к счастью, в нем нет необходимости. К эффективным дезинфицирующим средствам относятся Accel® (ускоренная перекись водорода 1:16), Accel® TB (перекись водорода 0,5%), энилконазол, отбеливатель в соотношении 1:32 с увеличенным временем контакта (не менее 10 минут), 2% пероксимоносульфат калия, формула 409. ® (четвертичный аммоний 0,3%) и Clorox Clean-Up® (гипохлорит натрия 1,84%). Все они оказались очень эффективными на предварительно очищенных поверхностях, где были удалены все органические вещества.Для получения дополнительной конкретной информации об эффективности различных чистящих составов против спор стригущего лишая, см. Это исследование 2013 года в Veterinary Dermatology.

Высокая температура (> 110 градусов) также эффективна. Этой температуры можно достичь с помощью коммерческих посудомоечных машин, некоторых промышленных паровых аппликаторов (но не обязательно домашних паровых очистителей ковров) и сушилок для одежды.

Средство от воздействия окружающей среды: 5 D.

Обеззараживание окружающей среды обычно несложно в типичном убежище с легко дезинфицируемыми и механически очищаемыми клетками.Это может представлять гораздо большую проблему в доме или в более домашней обстановке, например, в комнате для групповых кошек.

Нанесение агрессивных дезинфицирующих средств на каждую загрязненную поверхность в такой среде невозможно. К счастью, многого можно добиться путем выявления, удаления и лечения животных-носителей с последующим повторным нанесением смазки для локтей.

Грибковые культуры из окружающей среды могут избавить от догадок при дезактивации и избавить от лишней работы и беспокойства.Сначала тщательно очистите и продезинфицируйте, где это возможно, затем возьмите посевы из возможно зараженных участков, чтобы оценить успех (см. Ниже метод взятия мазка Свиффера). Если посев отрицательный, вероятно, участок можно безопасно снова открыть для кошачьих обитателей. Если положительный результат, по крайней мере, вы точно знаете, что вам нужно вернуться и попробовать еще раз. Это избавит вас от мучений, связанных с заменой ковров, мебели и т. Д. Пять рекомендаций по обеззараживанию стригущего лишая:

• Диагностировать
  • Выявление и лечение инфицированных животных и животных-носителей.Никакая очистка или дезинфекция не сработают, если одно или несколько животных повторно загрязняют окружающую среду.
  • Не забудьте проверить других домашних животных в приюте, особенно кошек.
  • Поражения человека также необходимо идентифицировать и лечить.
• Исключить
  • Сильно открытые предметы, такие как когтеточки, которые нельзя легко мыть или дезинфицировать, следует выбросить
• Debulk
  • Тщательная механическая очистка имеет большое значение для удаления стригущего лишая
  • Это включает в себя очистку загроможденных поверхностей, использование средства для электростатической очистки, такого как Swiffer®, для удаления как можно большего количества пыли и волос с каждой поверхности, а также очистку всех доступных областей пылесосом.
  • Промышленная паровая очистка ковров может быть полезной как для механической очистки, так и для термического уничтожения спор.
  • По возможности, фильтры печи и вентиляционные отверстия следует очистить и / или заменить. Однако в чистке воздуховодов часто нет необходимости.
• Дезинфицировать
  • После удаления органических веществ (трижды с помощью моющего средства и чистой тряпки) используйте эффективное дезинфицирующее средство, такое как Accel® 1:16, Accel® TB (перекись водорода 0.5%), энилконазол, отбеливатель в разведении 1:32, 2% пероксимоносульфат калия, Formula 409® (четвертичный аммоний 0,3%) или Clorox Clean-Up® (гипохлорит натрия 1,84%).
• Документ об успехе через экологическую культуру
  • Разрежьте Swiffer® на небольшие части, протрите возможно загрязненные поверхности до видимого загрязнения
  • Несколько раз нажмите Swiffer® на чашку для культивирования грибов, затем культивируйте как обычно
• При необходимости повторяйте пять D, пока экологические культуры не станут отрицательными!

Какие процедуры следует применять в случае вспышки в приюте для животных?

Оценка риска для животных, подвергшихся воздействию

Когда у любого животного из популяции диагностируется стригущий лишай, возникает вопрос: что вы делаете с другими животными в окружающей среде? Все ли они должны быть культурными? Должны ли они все быть изолированы в ожидании результатов посева? Все ли они нуждаются в лечении?

Ответы на эти вопросы зависят от нескольких факторов. Не все животные в одном доме или даже в одной комнате с животными, инфицированными стригущим лишаем, заразятся сами. Риск заражения зависит от индивидуального иммунного статуса животного и его привычек ухода, общей чистоты окружающей среды и степени близости между подвергнутыми воздействию и зараженными животными. Вот некоторые вопросы, которые следует задать:

Каков базовый уровень санитарии? Является ли эта среда хорошо очищаемой, например, группа клеток из нержавеющей стали в пустой комнате? Это дом с множеством когтеточек, мебелью и ковровым покрытием для сбора спор? Где-то посередине, например, группа клеток в грязной комнате, где валяется много всякого хлама? Используется ли отбеливатель или Accel для дезинфекции на регулярной основе?

Насколько близко были облучены животные? Были ли они все в отдельных клетках с минимальным обращением со стороны персонала, которое могло переносить инфекцию на их одежде? Было ли какое-то общее пространство, такое как тренировочная площадка или «комната для знакомств», где животные собираются вместе или проводят время без уборки между обитателями? Разрешено ли кошкам свободно бродить во время уборки, но в противном случае они содержатся отдельно?

Есть ли свидетельства распространения? Пострадало более одного животного? Все ли затронутые кошки из одной зоны приюта, или он обнаружился более чем в одной комнате? Пострадали ли животные, которые находились в приюте длительное время (> 2-4 недель)? (Это предполагает заражение в приюте, а не попадание в уже инфицированный. )

Если окружающая среда в основном чистая, животные обычно содержатся в разумных пределах и общее состояние здоровья животных хорошее, животные нередко выживают при незначительном воздействии и не заражаются. В идеале, всех подвергшихся воздействию животных следует выращивать с помощью зубной щетки, но это часто непрактично и может не потребоваться в достаточно хорошо управляемом приюте.

С другой стороны, посевы зубных щеток обычно требуются в приемных семьях, где есть широкие возможности для контакта, в приюте для кошек без клеток или в групповой комнате для кошек, или в любое время, когда есть доказательства значительного распространения (поражено несколько кошек). ).Для получения дополнительной информации об интерпретации грибковых культур («оценка патогенов») и управлении на основе результатов культивирования, пожалуйста, посетите https://www.giveshelter.org/dermatophyte-treatment-in-a-nutshell.html.

В случае настоящей вспышки многие приюты сочтут невозможным прекращение приема на время лечения. В таких случаях необходимо создать чистую отдельную зону для новых кошек. Если это невозможно, однократное погружение в известковую серу при приеме внутрь может снизить вероятность заражения, если кошку необходимо поместить в загрязненную среду.

Как всегда бывает, предотвращение вспышки инфекционного заболевания намного дешевле и проще для всех, чем борьба со вспышкой. После вспышки любого вида весь персонал должен встретиться, чтобы убедиться, что все сотрудники и волонтеры понимают, как возникла ситуация и какие методы контроля были наиболее эффективными для прекращения вспышки. На основе этой информационной встречи должен быть разработан, разработан план предотвращения вспышек в будущем, записан, опубликован и распространен, чтобы все участники осознавали свою роль в предотвращении будущих вспышек.

Лечение стригущего лишая в приемной семье или частном доме

Ежедневная уборка сводит к минимуму загрязнение окружающей среды, которое накапливается во время содержания пораженных животных. Кроме того, после того, как пораженные животные покинули окружающую среду (или выздоровели), потребуется тщательная очистка. Это будет намного проще, если животные будут находиться в небольшом помещении дома с минимальным количеством мебели и ковров (например, большая клетка для собак, ванная комната). Это особенно важно до тех пор, пока не будут завершены первые две недели эффективного местного лечения, а в идеале до получения хотя бы одной отрицательной культуры грибка.

Очистка домашней обстановки в случае заражения стригущим лишаем:

Ежедневно

• Все непористые поверхности следует протереть влажной шваброй, Swiffer® и / или пропылесосить (для сбора инфекционных волос) и продезинфицировать с помощью отбеливателя или Accel. Сюда входят полы, стены, столешницы, подоконники и держатели.
• Коврики следует пылесосить два раза в день. Пакеты для пылесоса следует регулярно выбрасывать.
• Постельное белье и защитную одежду следует менять ежедневно, стирать отдельно в горячей воде с четвертью стакана отбеливателя и сушить в сушилке (или выбрасывать)

После того, как пораженные животные были выброшены, выполните пять шагов D, как описано выше. Степень, в которой потребуется обширная очистка, зависит от уровня загрязнения окружающей среды. Если котята возились по дому в течение некоторого времени до постановки диагноза или если эффективное местное лечение не применялось постоянно, могут потребоваться значительные усилия. Если, с другой стороны, кошку содержали в разумных пределах на очищаемой территории и эффективно обрабатывали извне, базовой очистки может быть достаточно.

Некоторые шаги, которые следует учитывать, включают:

• Все животные, подвергшиеся воздействию, должны быть проверены на стригущий лишай, как описано выше, чтобы убедиться, что у них нет субклинических поражений
• Все постельные принадлежности, игрушки, щетки и т. Д.следует постирать / высушить или выбросить
• Все непористые поверхности следует тщательно очистить и продезинфицировать, если возможно, с помощью отбеливателя (разведение 1:32) или Accel®. Это нужно повторить как минимум дважды. Если используется отбеливатель, его необходимо нанести на предварительно очищенную поверхность и смыть после достаточного времени контакта (не менее 10 минут влажного контакта).
• Все открытые ковры и мебель следует пылесосить ежедневно в течение одной недели, а мешки для пылесоса выбрасывать ежедневно
• Необходимо пропылесосить все вентиляционные отверстия системы отопления и охлаждения или заменить фильтры.Обычно нет необходимости в промышленной чистке воздуховодов.
• Ковры следует очищать паром в промышленных условиях. Очистка паром моющими средствами, в которых используется горячая водопроводная вода, неэффективна, так как вода не достигает достаточно высокой температуры.
• Одежду, которую носили при контакте с кошками, следует постирать в горячей воде с отбеливателем, затем высушить в сушилке или развесить на солнце.
• Экологические культуры должны быть выполнены для проверки успешности дезактивации до повторного открытия приюта для новых животных

Краткое изложение профилактики стригущего лишая

• Не существует эффективной вакцины против стригущего лишая
• Абсолютно надежного скринингового теста не существует
• Соблюдайте правила содержания — содержите животных в чистоте и хорошо питайтесь, лечите другие болезни и от внешних и внутренних паразитов, всегда избегайте скопления людей и минимизируйте стресс
• Избегайте смешивания котят со взрослыми кошками
• Провести тщательный визуальный осмотр всех прибывающих животных и изолировать подозреваемых
• Дальнейший отбор кандидатов в приемные семьи и приемные семьи, как описано выше
• Во время вспышки болезни или в районах, где часто возникают проблемы со стригущим лишаем, разделите всех котят в легко дезинфицируемом помещении не менее двух недель с последующим тщательным повторным осмотром на наличие признаков стригущего лишая.
• Разработайте четкий письменный протокол обращения со стригущим лишаем и убедитесь, что персонал и приемные семьи знакомы с этим протоколом и признаками стригущего лишая.

Для получения дополнительной информации см. Серию веб-семинаров «Избавление от стригущего лишая» на ASPCApro.

Клинических рекомендаций Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии

Медицина и хирургия животных, Барселона, Испания; Майкл

Шипстоун, Дерматология для животных, Стаффорд-Хайтс,

Брисбен, Квинсленд 4053, Австралия; Сьюзан Литтл,

Больница для кошек Байтаун, Оттава, Канада; и Christoph Klin-

ger, Abteilung f €

ur Dermatologie und Allergologie Medi-

zinische Kleintierklinik der LMU M €

unchen, Германия.

Ссылки

1. Weitzman I, Summerbell RC. Дерматофиты. Clin Micro-

биол Ред. 1995; 8: 240–259.

2. Тейлор Дж. У. Один гриб = одно название: ДНК и номенклатура грибов —

через двадцать лет после ПЦР. IMA Fungus 2011; 2: 113–120.

3. Хоксворт Д.Л., Краус П.В., Редхед С.А. и др. Декларация плотины Амстер-

по грибной номенклатуре. IMA Fungus 2011; 2:

105–112.

4. Cafarchia C, Iatta R, Latrofa MS et al.Молекулярная эпидемиология,

Филогения и эволюция дерматофитов. Заражение Genet Evol

2013; 20: 336–351.

5. Монод М., Фратти М., Миньон Б. и др. Dermatophytes transmis

par les animaux Domestiques. Rev Med Suisse 2014; 10: 749–

753.

6. Ахмади Б., Мирхенди Х., Макимура К. и др. Филогенетический анализ

видов дерматофитов с использованием полиморфизма последовательности ДНК

в гене кальмодулина. Med Mycol 2016; 54: 500–514.

7. Symoens F, Jousson O, Planard C et al. Молекулярный анализ и брачное поведение комплекса видов

Trichophyton mentagrophytes

. Inter J Med Micro 2011; 301: 260–266.

8. Symoens F, Jousson O, Packeu A et al. Вид дерматофита

cies Arthroderma benhamiae: внутривидовая изменчивость и маточное поведение. J Med Micro 2013; 62: 377–385.

9. Друо С., Миньон Б., Фратти М. и др. Домашние животные в качестве основного источника

двух зоонозных видов комплекса Trichophyton mentagrophytes

в Швейцарии, Arthroderma vanbreuseghemii и

Arthroderma benhamiae.Vet Dermatol 2009; 20: 13–18.

10. Sieklucki U, Oh SH, Hoyer LL. Частое выделение Arthro-

derma benhamiae от собак с дерматофитиями. Вет Дер-

матол 2014; 25: 39-e14.

11. Gr

aser Y, Kuijpers A, El Fari M et al. Молекулярная и общепринятая таксономия комплекса Microsporum canis. Med

Mycol 2000; 38: 143–153.

12. Gr €

aser Y, Скотт Дж., Саммербелл Р. Концепция нового вида в

дерматофитах — полифазный подход.Mycopathologia 2008;

166: 239–256.

13. Шарма Р., Де Хуг С., Пресбер В. и др. Вирулентный генотип

Microsporum canis является причиной большинства инфекций человека

. J Med Microbiol 2007; 56: 1,377–1,385.

14. Де Хуг Г.С., Чатурведи В., Деннинг Д.В. и др. Изменения названий

для важных с медицинской точки зрения грибов и их значение для клинической практики

. J Clin Microbiol 2015; 53: 1,056–1,062.

15. Филпот С.М., Берри А.П.Нормальная грибковая флора собак. Myco-

патология 1984; 87: 155–157.

16. Мориелло К.А., ДеБоер DJ. Грибковая флора шерсти домашних кошек.

Am J Vet Res 1991; 52: 602–606.

17. Мориелло К.А., Deboer DJ. Грибковая плесень шерсти кошек с

и без дерматофитии. J Med Vet Mycol 1991; 29: 285–

292.

18. Мисон-Смит С., Дизель А., Паттерсон А. П. и др. Что живет

на коже вашей собаки? Характеристика кожных покровов собак

микобиота и грибковый дисбактериоз при аллергическом дерматите собак.

FEMS Microbiol Ecol 2015; 91: f v139.

19. Мисон-Смит С., Дизель А., Паттерсон А. П. и др. Характеристика

микобиоты кожи здоровых кошек и кошек с аллергией с использованием секвенирования

следующего поколения. Vet Dermatol 2016; 28: 71-e17.

20. Хоффманн А.Р., Паттерсон А.П., Дизель А. и др. Микро-

биом кожи

у здоровых и аллергических собак. PLoS ONE 2014; 9: e83197.

21. Скотт Д.В., Миллер У.Х., Эрб Х.Н. Кошачья дерматология в Корнеллском университете

: 1407 случаев (1988–2003).J Feline Med Surg 2013;

15: 307–316.

22. Скотт Д. У., Паради М. Обследование кожных заболеваний у собак и кошек —

человек, замеченных в университетской практике: Клиника мелких животных, Университет —

город Монреаль, Сен-Гиацинт, Квебек (1987–1988) . Банка

Ветеринар J 1990; 31: 830.

23. Hill P, Lo A, Eden CA et al. Обследование распространенности, диагностика

и лечение дерматологических заболеваний в общей практике мелких животных

.Vet Rec 2006; 158: 533–539.

24. О’Нил Д., Черч Д., МакГриви П. и др. Распространенность заболеваний

зарегистрировано у кошек, посещающих ветеринарные клиники первичного звена

Англия. Vet J 2014; 202: 286–291.

25. Хоби С., Линек М., Мариньяк Г. и др. Клинические характеристики и

причин зуда у кошек: многоцентровое исследование дерматозов, связанных с гипер-

чувствительностью кошек. Vet Dermatol 2011; 22:

406–413.

26.Сьерра П., Гийо Дж., Джейкоб Х. и др. Грибковая флора на кожных покровах и

слизистых оболочках кошек, инфицированных вирусом иммунодефицита кошек

или вирусом кошачьей лейкемии. Am J Vet Res 2000; 61:

158–161.

27. Манчианти Ф., Джаннелли С., Бендинелли М. и др. Микологическое открытие —

у кошек, инфицированных вирусом иммунодефицита кошек. J Med Vet

Mycol 1992; 30: 257–259.

28. Миньон Б., Лоссон Б. Распространенность и характеристика носительства

Microsporum canis у кошек.J Med Vet Mycology 1997;

35: 249–256.

29. Фогельнест Л. Кожные ксантомы с одновременным демодио-

сис и дерматофитоз у кошек. Aust Vet J 2001; 79: 470–475.

30. Preziosi DE, Goldschmidt MH, Greek JS et al. Feline pemphi-

gus foliaceus: ретроспективный анализ 57 случаев. Вет Дерма-

тол 2003; 14: 313–321.

31. Ирвин К.Е., Бил К.М., Фадок В.А. Использование модифицированного циклоспорина в

«Лечение листовой пузырчатки кошек»: ретроспективный анализ

.Vet Dermatol 2012; 23: 403 – e476.

32. Оливри Т., Пауэр Х., Ву Дж. И др. Аутоиммунитет против перешейка у нового животного семейства кошачьих

приобрел алопецию, напоминающую псевдопеладу

человек. Vet Dermatol 2000; 11: 261–270.

33. Zur G, White SD. Гиперадренокортицизм у 10 собак с

поражениями кожи в качестве единственных клинических признаков. J Amer An Hosp

Assoc 2011; 47: 419–427.

34. Chen C, Su B. Сопутствующий гиперадренокортицизм у маленького шнауцера

с тяжелой инфекцией Trichophyton mentagrophytes.

Вет дерматол 2002; 13: 211–229.

35. Холл Е, Миллер В., Медло Л. Лечение кетоконазолом генерализованного дерматофитоза

у собак с гиперадренокортицизмом. J

Amer An Hosp Assoc 1984; 20: 597–602.

36. Маккей Б., Джонстон И., О.Бойл Д. и др. Тяжелые дерматофитные инфекции

у собак и кошек. Aust Vet Pract 1997; 27: 86–90.

37. Cerundolo R. Generalized Microsporum canis dermatophyto-

sis у шести собак йоркширского терьера.Vet Dermatol 2004; 15: 181–

187.

38. Ангарано Д., Скотт Д. Использование кетоконазола для лечения матофитоза der-

у собак. J Am Vet Med Assoc 1987; 1: 434.

39. Льюис Д.Т., Фойл С.С., Хосгуд Г. Эпидемиология и клиническая картина

случаев дерматофитоза у собак и кошек в Университете штата Луизиана

: 1981–1990. Vet Dermatol 1991; 2: 53–58.

40. Джахам С.Д., Пейдж Н., Ламберт А. и др. Эмульсия энилконазола в

лечении дерматофитоза у персидских кошек: толерантность

и пригодность.В: Kwochka KW, Willemse T, Von Tscharner C,

eds. Достижения в ветеринарной дерматологии, том 3. Оксфорд:

Баттерворт Хайнеманн, 1998; 299–307.

41. Коломбо С., Корнелиани Л., Верчелли А. Эффективность итраконазола в качестве

комбинированная непрерывная / импульсная терапия при дерматофитозе кошек

sis: предварительные результаты в девяти случаях. Vet Dermatol 2001; 12:

347–350.

42. Патерсон С. Шампунь с миконазолом и хлоргексидином в качестве дополнения

к системной терапии для борьбы с дерматофитозом у кошек.J

Small An Pract 1999; 40: 163–166.

43. Вламинк К., Энгелен М. Обзор фармакокинетических и

фармакодинамических исследований при разработке итраконазола

для лечения дерматофитоза Microsporum canis у кошек. В: Hillier A,

Foster AP, Kwochka KW eds. Достижения в ветеринарной дерматолии —

ogy, том 5. Oxford: Blackwell Publishing, 2005; 130–136.

© 2017 Авторы. Ветеринарная дерматология, опубликованная John Wiley & Sons Ltd от имени ESVD и ACVD, 28, 266 – e68. 296

Moriello et al.

Дерматофитоз, «стригущий лишай» у кошек |

Обновление, март 2020 г.

Рекомендации по дерматофитиям были впервые опубликованы в J Feline Med Surg 2013, 15: 598-604 Tadeusz Frymus et al. Настоящее руководство было обновлено Тадеушем Фримусом.

Краткое содержание

• Дерматофития, обычно вызываемая Microsporum canis , является наиболее распространенной грибковой инфекцией у кошек и одним из наиболее серьезных инфекционных кожных заболеваний у этого вида.

• M. canis продуцирует артроспоры, которые могут оставаться заразными в течение примерно года и легко передаются при прямом контакте или через фомиты кошкам, другим видам животных и людям.

• Многие кошки инфицированы субклинически или являются фомитными переносчиками артроспор.

• Дерматофитоз может быть эндемическим заболеванием у групп кошек, особенно в неблагоприятных условиях окружающей среды, и в таких случаях его искоренить трудно.

• Круговая алопеция, шелушение и иногда эритематозный край вокруг центрального заживления («стригущий лишай») являются типичными поражениями этого хронического кожного заболевания.

• У многих кошек болезнь проходит самостоятельно, наблюдается только выпадение волос и шелушение. У молодых животных и взрослых с ослабленным иммунитетом исход может быть многоочаговым или генерализованным кожным заболеванием.

• Золотым стандартом обнаружения дерматофитов является посев на агаре Сабуро.Исследование с помощью лампы Вуда и микроскопическое обнаружение артроспор очень хороши для первоначального скрининга.

• Местное лечение может быть эффективным только для одиночных кошек с легкими локализованными поражениями. Для искоренения в группах кошек системную и местную терапию необходимо сочетать и поддерживать в течение нескольких недель, и в таких случаях решающее значение имеет интенсивная дезактивация окружающей среды.

• Для системной терапии препаратами выбора являются итраконазол или тербинафин.

• Рекомендуемое местное лечение — два раза в неделю полоскание тела раствором энилконазола или миконазол с хлоргексидином.

• Безопасные и эффективные вакцины для кошек против этой грибковой инфекции отсутствуют; ABCD не рекомендует вакцинацию.

Свойства агента

В отличие от одноклеточных дрожжей, дерматофиты (буквально: «кожные растения») представляют собой сложные грибы, растущие в виде гиф и образующие мицелий.Почти 40 видов, принадлежащих к родам Microsporum , Trichophyton и Epidermophyton , считаются дерматофитами. Более 90% случаев дерматофитии кошек во всем мире вызываются Microsporum canis (Moriello and DeBoer, 2012). Другие вызываются M. gypseum , T. mentagrophytes , T. quinckeanum , T. verrucosum или другими возбудителями. За исключением M. gypseum , все эти грибы вырабатывают протеолитические и кератолитические ферменты, которые позволяют им использовать кератин в качестве единственного источника питания после колонизации мертвой, ороговевшей части эпидермальной ткани (в основном stratum corneum и волос. , иногда гвозди).

Дерматофиты продуцируют артроспоры, которые обладают высокой устойчивостью и выживают в сухой среде в течение 12 месяцев или более (Sparkes et al., 1994b [EBM grade III]). Однако во влажной среде артроспоры недолговечны. Высокая температура (100 ° C) быстро их разрушает. Артроспоры очень прочно прикрепляются к кератину.

В зависимости от источника инфекции и резервуаров виды дерматофитов подразделяются на зоофильные, сильватические, геофильные и антропофильные грибы.

Эпидемиология

Хотя данные о распространенности дерматофитии ограничены, это заболевание считается наиболее распространенной грибковой инфекцией кошек во всем мире и одним из самых серьезных инфекционных кожных заболеваний у этого вида (Moriello et al. , 2017). Он может передаваться другим видам животных, а также является зоонозом (рис. 1, 2).

Рис. 1. Дерматофития ногтя человека. Предоставлено Энди Спарксом, AHT

.

Рис.2. Дерматофития на голове человека. Предоставлено Энди Спарксом, AHT

.

M. canis — типичный зоофильный дерматофит. Считалось, что субклинические инфекции очень распространены у кошек, особенно у длинношерстных животных старше 2 лет. Однако во многих группах распространенность относительно низкая. Следовательно, M. canis не следует рассматривать как часть нормальной грибковой флоры кошек, и его выделение от здорового животного указывает либо на субклиническую инфекцию, либо на носительство фомита (Moriello and DeBoer, 2012).

Артроспоры передаются главным образом при прямом контакте с больными или субклинически инфицированными кошками, а также с собаками или другими видами животных (Moriello, 2014). Кроме того, неинфицированные кошки могут пассивно переносить артроспоры на своей шерсти, тем самым действуя как фомиты. У больных животных стержни инфицированных волос хрупкие, а фрагменты волос, содержащие артроспоры, очень эффективны в распространении инфекции. Факторы риска включают: введение новых животных в питомник, выставки кошек, питомники, приюты, вязки и т. Д.Артроспоры легко распространяются на частицах пыли, в том числе в недоступные для кошек помещения. Поэтому следует также учитывать косвенный контакт (через загрязненные ошейники, щетки, игрушки, окружающую среду и т. Д.), Хотя это редко документируется (Moriello, 2014).

Кошки, живущие на открытом воздухе, особенно в сельской местности, могут подвергнуться воздействию M. gypseum , геофильного гриба, обитающего в почве. Кошки могут быть инфицированы T. mentagrophytes или T. quinckeanum при контакте с мелкими грызунами и T.verrucosum при контакте с крупным рогатым скотом.

Патогенез

Здоровая кожа действует как эффективный барьер против грибкового заражения. Повышенная скорость регенерации клеток эпидермиса в ответ на дерматофит с последующим удалением грибка с поверхности кожи является еще одним защитным механизмом. Поскольку дерматофиты не могут проникнуть через здоровую кожу, многие кошки являются просто пассивными носителями артроспор или остаются инфицированными субклинически.Приведет ли такая инфекция к клиническому заболеванию, зависит от многих факторов. Факторы, предрасполагающие к заболеванию, включают: молодой возраст (первые 2 года жизни), иммуносупрессию (включая иммунодепрессивное лечение), другие заболевания, дефицит питательных веществ (особенно белков и витамина А), высокую температуру и высокую влажность (Moriello and DeBoer, 2012). Для облегчения инфекции очень важны любые травмы кожи в результате повышенной влажности, травмы эктопаразитами или царапины из-за зуда, игры или агрессивного поведения, стрижки и т. Д.В целом, плохая гигиена является предрасполагающим фактором. В переполненных группах кошек социальный стресс может играть важную роль. Это может затруднить искоренение стригущего лишая в питомниках или приютах, инфицированных M. canis .

Исследовано потенциальное иммуносупрессивное действие вируса иммунодефицита кошек (FIV) и вируса лейкемии кошек (FeLV) на распространенность грибковой инфекции. Более высокая распространенность M. canis у FIV-инфицированных животных по сравнению с нормальными кошками, о которых сообщалось в одном исследовании (Mancianti et al., 1992) не наблюдалась другой группой (Sierra et al., 2000). Было высказано предположение, что любая ассоциация может быть связана с различиями в окружающей среде, а не с ретровирусным статусом кошек (Mignon and Losson, 1997). В недавнем консенсусе был сделан вывод, что серопозитивный статус FIV и / или FeLV сам по себе не увеличивает риск дерматофитоза (Moriello et al., 2017).

Инкубационный период стригущего лишая, вызванного M. canis , составляет от 1 до 3 недель.За это время гифы растут вдоль стержней волос через роговой слой к фолликулам, где они производят споры, которые образуют толстый слой вокруг стержней волос. Поскольку дерматофиты чувствительны к высоким температурам, они не могут колонизировать более глубокие части кожи или сам фолликул. Таким образом, волосы растут нормально, но легко ломаются у поверхности кожи, что приводит к их выпадению. Некоторые продукты метаболизма грибка могут вызывать воспалительную реакцию в коже и могут наблюдаться в основном вокруг инфицированной области, образуя иногда кольцевые поражения с центральными участками заживления и папулами на периферии («стригущий лишай»).

У многих иммунокомпетентных кошек, живущих в гигиенических условиях, эти поражения ограничены (например, на голове) и исчезают через несколько недель. У животных с ослабленным иммунитетом результатом может быть мультифокальное или генерализованное кожное заболевание с вторичными бактериальными инфекциями. В редких случаях выраженная воспалительная реакция на гифы вызывает узловатую гранулематозную реакцию, вовлекающую дерму и дренирующуюся на поверхности кожи. Эти так называемые псевдомицетомы чаще встречаются у персидских кошек, иногда одновременно с классическими поражениями.

Патогенез других дерматофитных инфекций аналогичен описанному выше.

Иммунитет

Естественный стригущий лишай редко повторяется, что свидетельствует об эффективном и длительном иммунитете. Экспериментальные исследования подтверждают, что животные проявляют повышенную устойчивость к последующему заражению гомологичным грибком. Повторное инфицирование может произойти, но для этого требуется гораздо большее количество спор, и обычно эти последующие инфекции исчезают быстрее (Moriello and DeBoer, 2012).Было высказано предположение, что для развития полного иммунитета инфекция должна протекать своим естественным течением, поскольку у кошек, у которых инфекция была прервана противогрибковым лечением, реакции гиперчувствительности замедленного типа часто были слабее (Moriello et al. , 2003).

Хотя дерматофитная инфекция ограничивается поверхностными ороговевшими тканями, индуцируются гуморальные и клеточные иммунные ответы. Выраженная активация Т-хелперных клеток 2-го типа (Th3) и соответствующий цитокиновый профиль приводят к образованию антител с последующим хроническим заболеванием, тогда как активация Th2-клеток стимулирует клеточно-опосредованный ответ, характеризующийся интерфероном-γ, интерлейкинами 12 и 2, и приводит к выздоровлению. (Спаркес и др., 1995; Moriello и DeBoer, 2012). Такие кошки защищены от повторного заражения (Sparkes et al., 1993a). Роль гуморального ответа при дерматофитии неясна, хотя антитела могут оказывать фунгистатический эффект посредством опсонизации и активации комплемента (Sparkes et al., 1994a).

Клинические признаки

У многих кошек дерматофиты вызывают легкую, самоограничивающуюся инфекцию с выпадением и шелушением волос.

Типичным проявлением стригущего лишая у кошек является регулярная и круговая алопеция с ломкой шерсти, шелушением, а иногда и эритематозным краем и центральным заживлением (Chermette et al. , 2008; Moriello и DeBoer, 2012). Поражения иногда очень маленькие, но иногда могут иметь диаметр 4-6 см. Пораженные участки могут быть одиночными или множественными и локализуются в основном на голове (рис. 3), но также и на любой части тела, включая дистальные части ног и хвост. В частности, у молодых кошек наблюдаются поражения, локализующиеся сначала на переносице, а затем на висках, внешней стороне ушных раковин и краях ушных раковин (рис. 4). Множественные поражения могут сливаться.Зуд варьирует, обычно от легкого до умеренного, и обычно не наблюдается лихорадки или потери аппетита (Chermette et al., 2008; Moriello and DeBoer, 2012).

Рис. 3. Дерматофития во многих случаях начинается на голове. Предоставлено International Cat Care (ранее Feline Advisory Bureau)

Рис. 4. Поражения на носу; любезно предоставлено Энди Спарксом, AHT

У некоторых кошек дерматофития может проявляться в виде папуло-коркового дерматита («милиарный дерматит»), поражающего в основном спинной хобот.

У кошек с ослабленным иммунитетом обширные поражения со вторичным бактериальным поражением иногда связаны с хроническим стригущим лишаем. У таких пациентов наблюдаются атипичные большие участки облысения, эритема, зуд, экссудация и корки (рис. 5). На этом этапе дерматофития может имитировать другие дерматологические состояния. Типичные признаки все еще могут быть видны на краях поражений.

Рис. 5. В частности, у кошек с ослабленным иммунитетом дерматофитоз может быть многоочаговым и даже генерализованным.Предоставлено International Cat Care (ранее Feline Advisory Bureau)

Редкий исход — ониксис и перионикс и исключительно узловой гранулематозный дерматит (псевдомицетома) с единичными или множественными кожными узелками, твердыми и безболезненными при пальпации (Nuttall et al., 2008). Возможны свищи этих узелков. Псевдомицетома в виде образования в брюшной полости может быть редким осложнением лапаротомии у животных с кожным дерматофитозом (Black et al. , 2001; Bianchi et al., 2017).

Диагностика

Поскольку дерматофиты могут вызывать поражения, подобные многим кожным заболеваниям кошек, их следует рассматривать у всех кошек с любыми кожными заболеваниями. По возможности перед любым лечением следует провести диагностику дерматофитов.

Рис. 6. Предварительный диагноз: флуоресценция при освещении лампой Вуда. Предоставлено Энди Спарксом, AHT

.

Недорогой и простой инструмент для скрининга M.canis — исследование с помощью лампы Вуда (рис. 6, 7). Во время процедуры инфицированные стержни волос проявляют флуоресценцию яблочно-зеленого цвета. Обычно считается, что этот метод не очень чувствителен, так как только около 50% из штаммов M. canis флуоресцируют, а другие дерматофиты — нет (Sparkes et al., 1994c). Кроме того, мусор, накипь, ворсинки и лекарства для местного применения (например, тетрациклин) могут давать ложноположительные результаты. Таким образом, выводы лампы Вуда должны быть подтверждены другими методами.Однако, согласно выводам Moriello (Moriello, 2014), по крайней мере, часть так называемых «нефлуоресцирующих штаммов M. canis » могла быть выращена на кошках, которые на самом деле не были инфицированы, а были только пассивными носителями спор (и споры не флуоресцируют). Точно так же, по ее опыту, правильная техника обследования может значительно снизить количество ложноположительных и ложноотрицательных результатов. Она также предположила, что расхождения в отношении полезности лампы Вуда могли частично быть результатом другого качества доступной модели, и пришла к выводу, что лампа с центральной областью, которая позволяет увеличивать исследуемое место, используемое обученным наблюдателем, является очень полезной первой. линейный диагностический тест [EBM степень IV].Советы по правильному использованию лампы Вуда описаны в обзоре (Moriello, 2014).

Рис. 7. Флуоресценция при освещении лампой Вуда. Предоставлено Энди Спарксом, AHT

.

Прямое микроскопическое исследование — еще один простой и быстрый метод обнаружения дерматофитов на волосках или чешуях. Для этого настоятельно рекомендуется выщипывать волоски при освещении лампой Вуда, что намного лучше, чем извлекать их с края поражения (Moriello, 2014).Перед исследованием образец должен быть очищен 10-20% КОН, хотя возможно прямое наблюдение в капле минерального масла (Moriello, 2014). Существует ряд методов для улучшения визуализации грибковых элементов на стержнях волос (Moriello and DeBoer, 2012). Волосы или фрагменты волос с гифами и артроспорами более толстые, с шероховатой и неровной поверхностью. Однако прямое микроскопическое исследование может дать ложноположительные результаты, особенно если присутствуют споры сапрофитных грибов или мусор интерпретируется как грибковые элементы.Кроме того, чувствительность этого метода относительно низкая и оценивается в 59% (Sparkes et al., 1993b). Более высокая чувствительность (76%) была достигнута с помощью флуоресцентной микроскопии с калькафлуоровым белым — специальным флуоресцентным красителем, который прочно связывается со структурами, содержащими целлюлозу и хитин (Sparkes et al. , 1994c).

Культура на агаре с декстрозой Сабуро или других средах обычно считается золотым стандартом для обнаружения дерматофитов, однако неправильный отбор проб и / или метод посева может привести к ложным результатам (Moriello et al., 2017). Этот метод очень чувствителен и может определять вид. Образцы (волосы, чешуйки) следует собирать с краев новых очагов поражения после осторожной протирки спиртом для уменьшения загрязнения. Если есть подозрение на субклиническую инфекцию или пассивное носительство, чистка стерильной щеткой в ​​течение 5 минут является лучшим методом взятия материала пробы. Совершенно новая зубная щетка микологически стерильна (Moriello and DeBoer, 2012). После такой процедуры количество колоний на чашке отражает серьезность инфекции, и некоторые приюты приняли систему «оценки патогенов» для мониторинга лечения (Moriello, 2014; Moriello et al., 2017). Засеянные среды обычно инкубируют до 3 недель до определения отсутствия роста грибов. Недавно на 2876 культурах M. canis было показано, что только 2,6% из них требовалось> 14 дней для получения положительного результата (Stuntebeck et al., 2018). Несколько коммерческих сред для тестирования дерматофитов (DTM) на основе изменения цвета доступны в продаже. Однако было сделано несколько попыток оценить эффективность таких сред на ветеринарных образцах (Chermette et al., 2008). Следовательно, подозрительные колонии необходимо исследовать под микроскопом, чтобы подтвердить присутствие грибка (Moriello and DeBoer, 2012; Kaufmann et al., 2016).

ПЦР

может быть полезной для подтверждения инфекции M. canis у подозреваемой кошки (Nardoni et al., 2007; Moriello and Leutenegger, 2018; Jacobson et al., 2018). Было показано, что коммерчески доступная панель ПЦР дерматофитов в реальном времени высокочувствительна и специфична для диагностики инфекции M. canis по сравнению с грибковой культурой, но ненадежна для определения микологического излечения, поскольку часто были ложноположительные результаты (Jacobson et al. др., 2018).Они могут быть результатом обнаружения мертвых грибковых организмов или пассивного переноса спор (Moriello et al., 2017). Однако отрицательный результат ПЦР у пролеченной кошки означает микологическое излечение (Moriello et al., 2017).

Редко встречающиеся узелковые или атипичные поражения следует оценивать с помощью биопсии кожи и гистопатологии или цитологического исследования аспирата (Moriello et al., 2017).

Ведение болезней

У иммунокомпетентных кошек изолированные поражения исчезают спонтанно через 1-3 месяца и могут не требовать лечения.Однако лечение таких случаев снизит течение болезни, а также риск для других животных и людей и загрязнение окружающей среды.

Местная терапия является необходимой частью лечения, потому что это единственный способ уничтожить споры на шерсти (Moriello, 2014). Однако в качестве лечения он обычно менее эффективен для кошек по сравнению с людьми из-за плохого проникновения лекарств через шерсть, непереносимости этой процедуры многими кошками и возможного существования незаметных небольших повреждений. Таким образом, терапевтические меры должны включать сочетание системного и местного лечения, продолжающееся не менее 10 недель. Как правило, кошек следует лечить не только до тех пор, пока поражения полностью не исчезнут, но и до тех пор, пока дерматофиты не перестанут культивироваться на волосах, по крайней мере, при двух последовательных чистках с интервалом в 1-3 недели. Недавно было высказано предположение, что у кошек, у которых было строгое соблюдение правил очистки окружающей среды, а также рекомендаций по местному и системному лечению, две последовательные отрицательные культуры грибов могут не потребоваться для определения микологического излечения.Если соблюдается хорошая методика отбора проб, первый отрицательный посев у здоровой кошки, вероятно, указывает на устранение возбудителя (Stuntebeck and Moriello, 2019). Кроме того, отрицательный результат ПЦР у пролеченной кошки означает микологическое излечение (Moriello et al., 2017).

В питомниках и приютах инфекцию дерматофитами очень трудно искоренить, она требует много времени и средств. Поэтому важно соблюдение требований владельца. Необходима программа лечения с полным разделением инфицированных и неинфицированных животных и интенсивной очисткой и обеззараживанием окружающей среды.Это потребует прерывания программ разведения и выставок. Кошек целесообразно разделить на 3 категории:

больных животных (положительные как на очаги поражения, так и на культуру, обычно положительные по лампе Вуда)

субклинически инфицированные (без повреждений, положительный результат посева, обычно положительный результат на лампу Вуда)

кошек-носителей фомита (без повреждений, отрицательный результат по лампе Вуда и отрицательный результат при повторной культуре грибов)

Все животные в питомнике должны лечиться, однако переносчиков фомитов лечат только местно, что позволяет избежать длительной дорогостоящей и ненужной системной терапии.При обращении с инфицированными животными необходимо соблюдать особые меры гигиены, чтобы предотвратить заражение людей (перчатки, дезинфекция кошачьих царапин или любых других травм). Большое количество рекомендаций по ведению инфицированных групп кошек недавно было опубликовано в Рекомендациях по клиническому консенсусу Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии «Диагностика и лечение дерматофитоза у собак и кошек» (Moriello et al., 2017).

Местная терапия

У кошек с ограниченным количеством поражений волосы следует подстригать по периферии поражений, включая широкий край.Стрижка должна быть щадящей, чтобы избежать распространения инфекции из-за микротравм. Точечное лечение поражений может иметь ограниченную эффективность; вместо этого рекомендуется вымыть шампунем, окунуть или ополоснуть все тело. У пациентов с генерализованным заболеванием, длинношерстных кошек и для дезинфекции питомника может быть полезно стричь кошку целиком, чтобы упростить местную терапию и обеспечить лучшее проникновение препарата. Такой подход также ограничивает распространение спор в окружающую среду, среди людей и других животных.После удаления всего волосяного покрова, включая усы, все волосы следует обернуть и продезинфицировать перед утилизацией. Необходима химическая или термическая стерилизация инструментов. Кошек нельзя стричь в ветеринарных клиниках, чтобы избежать загрязнения окружающей среды. Лучшее место для стрижки — в собственном доме кошки, где окружающая среда уже загрязнена. Однако есть сообщения, что стрижка всей кошки приводила к распространению дерматофитии на неинфицированные участки кожи и ухудшению тяжести заболевания (Moriello et al., 2017). Поэтому вместо использования машинок для стрижки, которые могут вызвать травму, следует рассмотреть возможность укорочения волос ножницами. Ножницы также можно более тщательно и легко дезинфицировать.

Противогрибковые препараты для местного применения сильно различаются по своей эффективности. Одна из наиболее эффективных процедур — это лечение всего тела 0,2% раствором энилконазола, проводимое два раза в неделю (Moriello and DeBoer, 2012). О местных или общих побочных эффектах очень редко сообщают, если не допускать ухода (елизаветинский ошейник) до тех пор, пока кошка не высохнет (Hnilica and Medleau, 2002).Очень эффективен также 2% миконазол с 2% хлоргексидином в качестве ополаскивателя или шампуня два раза в неделю (Moriello and DeBoer, 2012; Moriello et al., 2017). В США широко используется раствор извести и серы (смесь полисульфидов кальция) с очень хорошими результатами.

Системная терапия

Итраконазол

Несмотря на то, что итраконазол является относительно дорогим, в настоящее время он является предпочтительным препаратом при дерматофитиях кошек и лицензирован по этому показанию (Moriello and DeBoer, 2012).Он сопоставим (или превосходит) по эффективности кетоконазолу или гризеофульвину и намного лучше переносится кошками. Единственная побочная реакция, о которой иногда сообщается, — это анорексия. Эмбриотоксичность и тератогенность итраконазола также ниже, чем у кетоконазола. Тем не менее его применение при беременности не рекомендуется. Возможно использование у котят в возрасте от 6 недель. Большинство ветеринарных дерматологов будут использовать итраконазол в качестве так называемой пульс-терапии, которую также рекомендует производитель.Этот протокол эффективен, а также снижает стоимость лечения. Было предложено пульсовое введение 5 мг / кг / день в течение одной недели, каждые две недели в течение 6 недель (Colombo et al., 2001). Другое исследование продемонстрировало достаточные уровни итраконазола в плазме и шерсти кошек со стригущим лишаем, которым было проведено три цикла лечения, состоящие из одной недели с лечением (5 мг / кг / день) и одной недели без лечения. Снижение уровней на 25-30% наблюдалось после недели без лечения, но концентрации оставались достаточно высокими даже через две недели после последнего введения (Vlaminck and Engelen, 2004 [EBM степень IV]).Эти данные показывают, что такая схема лечения (прием доз 3 х 7 дней) обеспечивает фактический охват по крайней мере 7 недель.

Тербинафин

Тербинафин, вводимый перорально в дозе 30-40 мг / кг один раз в день, также очень эффективен (Nuttall et al., 2008; Moriello and DeBoer, 2012; Moriello et al., 2017). Кажется, также подходит для пульс-терапии. После приема в течение 14 дней тербинафин сохранялся в волосах кошек в подавляющих концентрациях в течение 5,3 недель (Foust et al., 2007 [EBM grade III]). В качестве побочных эффектов наблюдались эпизодическая рвота и интенсивный кожный зуд.

Кетоконазол

Кетоконазол применялся перорально 2,5–5 мг / кг два раза в день. Однако кошки относительно восприимчивы к побочным эффектам этого препарата, включая токсичность для печени, анорексию, рвоту, диарею и подавление синтеза стероидных гормонов. Кетоконазол также противопоказан беременным животным.

Гризеофульвин

В некоторых странах до сих пор используется гризеофульвин.Однако сейчас это вообще не рекомендуется, так как доступны более безопасные и эффективные препараты. Его вводят перорально в течение как минимум 4-6 недель в дозе 25-50 мг / кг от одного до двух раз в день. Гризеофульвин плохо растворяется в воде и микронизированном составе, а также прием с жирной пищей улучшает всасывание. Побочные реакции включают анорексию, рвоту, диарею и угнетение функции костного мозга, особенно у сиамских, гималайских и абиссинских кошек. Использование гризеофульвина противопоказано котятам в возрасте до 6 недель и беременным животным, поскольку это соединение обладает тератогенным действием, особенно в течение первых недель беременности.Есть несколько сообщений, предполагающих, что инфекция FIV предрасполагает кошек к подавлению костного мозга, вызванному гризеофульвином. Таким образом, кошки должны быть проверены на эту инфекцию до начала терапии. Если выбран гризеофульвин, необходимо ежемесячно проводить общий анализ крови для выявления возможного угнетения костного мозга.

Луфенурон

Луфенурон — ингибитор синтеза хитина, используемый для предотвращения заражения блохами собак и кошек. Поскольку хитин также является компонентом клеточной стенки грибов, ожидалось противогрибковое действие.Однако исследования на кошках не продемонстрировали противогрибкового эффекта, и луфенурон не рекомендуется для лечения дерматофитии (Moriello and DeBoer, 2012; Moriello et al., 2017).

Другие варианты

Считается, что иммунотерапия крупного рогатого скота и пушных зверей с применением антидерматофитных вакцин уменьшает поражения и ускоряет их исчезновение. Хотя вакцины M. canis были проданы для лечения пораженных кошек, трудно найти контролируемые исследования, демонстрирующие эффективность этой процедуры у кошек.Были опубликованы результаты плацебо-контролируемого двойного слепого исследования, проведенного на 55 кошках с тяжелым дерматофитозом, вызванным M. canis или T. mentagrophytes (Westhoff et al., 2010). Инактивированная вакцина, содержащая антигены M. canis , M. canis var. distortum , M. canis var. obesum , M. gypseum и T. mentagrophytes вводили больным животным трижды внутримышечно. Наблюдалась тенденция улучшения у всех кошек после терапевтической вакцинации, хотя это улучшение существенно не отличалось от такового у кошек, получавших плацебо.

Обеззараживание окружающей среды

Тщательная (ежедневная) уборка пылесосом и механическая чистка необходимы для удаления инфекционного материала (не должно быть видимых волосков), особенно в домах с одной или несколькими кошками, где дезинфекция нецелесообразна. Однако в питомниках и приютах дезинфекция очень важна, и ее следует проводить не реже двух раз в неделю (Moriello et al., 2017). Большинство дезинфицирующих средств, обозначенных как «противогрибковые», обладают фунгицидным действием против мицелиальных форм дерматофитов или макроконидий, но не против артроспор.Наиболее эффективными против артроспор являются известково-сера в соотношении 1:33, 0,2% -ный энилконазол и бытовой хлорный отбеливатель от 1:10 до 1: 100 (Moriello and DeBoer, 2012). Также было показано, что ускоренная перекись водорода очень эффективна (Moriello, 2019). Все поверхности следует очистить одним из этих растворов. Состав дымового фумиганта с энилконазолом доступен во многих европейских странах.

Подробные процедуры дезактивации, а также управление зараженными питомниками и убежищами во время лечения описаны в другом месте (Carlotti et al., 2009; Мориелло и ДеБоэр, 2012; Мориелло, 2014; Moriello et al., 2017).

Вакцинация

Было проведено и опубликовано очень мало исследований эффективности вакцин против M. canis (профилактических или терапевтических) для кошек. Хотя достигнуты значительные успехи в профилактическом или терапевтическом применении противодерматофитных вакцин у крупного рогатого скота и пушных зверей, безопасная и эффективная вакцина для кошек все еще недоступна (Chermette et al., 2008; Лунд и ДеБоэр, 2008; Moriello et al., 2017).

А убитая вакцина M. canis с клеточной стенкой индуцировала как гуморальный, так и клеточно-опосредованный иммунитет у экспериментальных кошек; однако эти ответы не защищали кошек от заражения (DeBoer and Moriello, 1994). Точно так же антигены M. canis в сочетании с живой вакциной Trichophyton не индуцировали защитный иммунитет против местного заражения M. canis (DeBoer et al., 2002). Коммерческая вакцина, состоящая из убитых компонентов M. canis в адъюванте, была лицензирована в США для лечения кошек, а не для профилактики. Однако у экспериментальных кошек эта вакцина не препятствовала возникновению контрольной инфекции, а также не обеспечивала более быстрого излечения установленной инфекции у вакцинированных кошек по сравнению с невакцинированными контрольными животными (DeBoer et al., 2002). Товар был снят с продажи. Были рассмотрены некоторые другие исследования по разработке вакцин от дерматофитоза (Lund and DeBoer, 2008).

ABCD не рекомендует вакцинацию от дерматофитоза.

Зоонозный риск

Инфекция M. canis у людей является излечимым кожным заболеванием. У пациентов с ослабленным иммунитетом время лечения может быть увеличено, но серьезные осложнения крайне редки (Moriello et al., 2017).

Благодарность

ABCD Europe с благодарностью отмечает поддержку Boehringer Ingelheim (спонсор-основатель ABCD) и Virbac.

Список литературы

Bianchi MV, Laisse CJM, Vargas TP, Wouters F, Boabaid FM, Pavarini SP, Ferreiro L, Driemeier D (2017): Интраабдоминальная грибковая псевдомицетома у двух кошек. Преподобный Ибероам Микол 34 (2), 112-115. DOI: 10.1016 / j.riam.2016.10.001.

Black SS, Abernethy TE, Tyler JW, Thomas MW, Garma-Aviňa A, Jensen HE (2001): Внутрибрюшная дерматофитная псевдомицетома у персидской кошки. J Vet Intern Med 15, 245–248.

Carlotti DN, Guinot P, Meissonnier E, Germain PA (2009): Искоренение дерматофитоза кошек в приюте: полевое исследование.Ветеринарный дерматол 21, 259-266.

Chermette R, Ferreiro L, Guillot J (2008): Дерматофитозы у животных. Mycopathologia 166, 385-405.

Colombo S, Cornegliani L, Vercelli A (2001): Эффективность итраконазола в качестве комбинированной непрерывной / импульсной терапии при дерматофитии кошек: предварительные результаты в девяти случаях. Vet Dermatol 12, 347–350.

DeBoer DJ, Moriello KA (1994): Иммунный ответ на Microsporum canis , индуцированный вакциной против грибковой клеточной стенки.Ветеринарный дерматол 5, 47-55.

DeBoer DJ, Moriello KA, Blum JL, Volk LM, Bredahl LK (2002): Безопасность и иммунологические эффекты после инокуляции инактивированных и комбинированных живых инактивированных дерматофитических вакцин кошкам. Am J Vet Res 63, 1532–1537.

Foust AL, Marsella R, Akucewich LH и др. (2007): Оценка стойкости тербинафина в шерсти нормальных кошек после 14 дней ежедневной терапии. Vet Dermatol 18, 246-251.

Hnilica KA, Medleau L (2002): Оценка местного применения энилконазола для лечения дерматофитоза в персидском питомнике.Vet Dermatol 13, 23-28.

Якобсон Л.С., Макинтайр Л., Микуш Дж. (2018): Сравнение ПЦР в реальном времени с грибковой культурой для диагностики дерматофитии Microsporum canis у кошек из приютов: полевое исследование. J Feline Med Surg. 20 (2), 103-107. DOI: 10.1177 / 1098612X17695899.

Kaufmann R, Blum SE, Elad D, Zur G (2016): Сравнение тестовой среды на дерматофиты в местах оказания помощи и микологической лабораторной культуры для диагностики дерматофитоза у собак и кошек.Ветеринарный дерматол 27 (4), 284-e68. doi10.1111 / vde.12322.

Lund A, DeBoer DJ (2008): Иммунопрофилактика дерматофитии у животных. Mycopathologia 166, 407-424.

Mancianti F, Giannelli C, Bendinelli M, Poli A (1992): Микологические находки у кошек, инфицированных вирусом иммунодефицита кошек. J Med Vet Mycol 30, 257–259.

Mignon BR, Losson B (1997): Распространенность и характеристика носительства Microsporum canis у кошек.J Med Vet Mycol 35, 249-256.

Мориелло К. (2014 г.): Дерматофитоз кошек: аспекты, относящиеся к ведению болезней у одной или нескольких кошек. J Feline Med Surg 16, 419-431. DOI: 10.1177 / 1098612X14530215.

Moriello KA, DeBoer DJ (2012): Дерматофитоз. В: Грин CE (ред.): Инфекционные болезни собак и кошек. 4 ^-е изд. Elsevier, стр. 588-602.

Moriello KA, DeBoer DJ, Greek J, Kukl K, Fintelman M (2003): Распространенность реакций гиперчувствительности немедленного и замедленного типа на антигены Microsporum canis у кошек.J Feline Med Surg 5, 161–166.

Мориелло К.А., Койнер К., Патерсон С., Миньон Б. (2017): Диагностика и лечение дерматофитии у собак и кошек. Клинические рекомендации Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии. Ветеринарный дерматол 28 (3), 266-e68. DOI: 10.1111 / vde.12440.

Moriello KA, Leutenegger CM (2018): Использование коммерческого анализа количественной ПЦР у 52 кошек из приютов с высоким риском для выявления дерматофитоза и микологического излечения.Ветеринарный дерматол 29 (1), 66-e26. DOI: 10.1111 / vde.12485.

Moriello KA (2019): Обеззараживание 70 домов приемных семей, подвергшихся воздействию кошек, инфицированных Microsporum canis: ретроспективное исследование. Ветеринарный дерматол 30 (2), 178-e55, DOI: 10.1111 / vde.12722.

Nardoni S, Franceschi A, Mancianti F (2007): Идентификация Microsporum canis из дерматофитной псевдомицетомы в залитых в парафин ветеринарных образцах с использованием общего протокола ПЦР. Микозы 50, 215-217.

Nuttall TJ, German AJ, Holden SL, Hopkinson C, McEwan NA (2008): Успешное разрешение дерматофитной мицетомы после лечения тербинафином у двух кошек. Ветеринарный дерматол 19, 405-410.

Sierra P, Guillot J, Jacob H, Bussiéras S, Chermette R (2000): Грибковая флора на кожных и слизистых поверхностях кошек, инфицированных вирусом иммунодефицита кошек или вирусом кошачьей лейкемии. Am J Vet Res 61, 158–161.

Sparkes AH, Gruffydd-Jones TJ, Shaw SE, Wright AI, Stokes CR (1993b): Эпидемиологические и диагностические особенности дерматофитоза собак и кошек в Соединенном Королевстве с 1956 по 1991 год.Vet Rec 133, 57-61.

Sparkes AH, Stokes R, Gruffydd-Jones TJ (1993a): Гуморальный иммунный ответ у кошек с дерматофитиями. Am J Vet Res 54, 1869–1873.

Sparkes AH, Stokes R, Gruffydd-Jones TJ (1994a): разделение дерматофитных антигенов с помощью SDS-PAGE и вестерн-иммуноблоттинг при дерматофитии кошек. Mycopathologia 128, 91–98.

Sparkes AH, Stokes R, Gruffydd-Jones TJ (1995): экспериментальная инфекция Microsporum canis у кошек: корреляция между иммунологическими и клиническими наблюдениями.J Med Vet Mycol 33, 177–184.

Sparkes AH, Werrett G, Stokes CR, Gruffydd-Jones TJ (1994b): Microsporum canis : неявное носительство кошек и жизнеспособность артроспор. J Small Anim Pract 35, 397-401.

Sparkes AH, Werrett G, Stokes CR, Gruffydd-Jones TJ (1994c): Повышенная чувствительность в диагностике дерматофитоза с помощью флуоресцентной микроскопии с калькафлуор-белым. Vet Rec 134, 307-308.

Stuntebeck R, Moriello KA, Verbrugge M (2018): Оценка времени инкубации культур дерматофитов Microsporum canis.J Feline Med Surg 20 (10), 997-1000. DOI: 10,1177 / 1098612X17729286.

Stuntebeck RL, Moriello KA (2019): Одна против двух отрицательных грибковых культур для подтверждения микологического излечения у кошек из приюта, получавших лечение от Microsporum canis dermatophytosis: ретроспективное исследование. J Feline Med Surg 3. DOI: 10.1177 / 1098612X19858791.

Vlaminck KMJA, Engelen MACM (2004): Итраконазол: лечение с использованием фармакокинетических основ. Vet Dermatol 15, 8.

Westhoff DK, Kloes M-C, Orveillon FX, Farnow D, Elbers K, Mueller RS ​​(2010): Лечение дерматофитоза кошек инактивированной грибковой вакциной.Откройте Mycology J 4, 10-17.

Дерматофитоз у собак — симптомы, причины, диагностика, лечение, выздоровление, управление, стоимость

После диагностики дерматофитоза целью лечения будет устранение грибков с кожи собаки, восстановление волос и кожи до нормального состояния и профилактика распространение инфекции на других членов семьи. Следовательно, лечение дерматофитоза будет включать комбинацию местной, системной терапии и дезинфекции загрязнения окружающей среды.

Местное лечение

Местное лечение лучше всего, если оно применяется ко всему телу собаки в виде шампуней, ополаскивателей или окунаний. Ваш ветеринар может посоветовать подстричь или побрить шерсть вашего питомца, чтобы облегчить лечение. Местное лечение обычно следует продолжать не менее 4-6 недель. Некоторые местные растворы, которые оказались эффективными против дерматофитоза, включают сульфид серы, энилконазол, хлоргексидин + миконазол и хлоргексидин + кетоконазол.

Отдельные поражения можно лечить точечно с помощью предписанной противогрибковой мази. После купания или нанесения мази на питомца обязательно вымойте руки и продезинфицируйте все поверхности, с которыми собака контактировала.

Системное лечение

Пероральные противогрибковые препараты, которые может назначить ваш ветеринар, включают гризеофульвин, тербинафин, луфенурон и итраконазол. Каждое из этих лекарств может иметь побочные эффекты, поэтому они должны находиться под строгим прямым ветеринарным наблюдением.Беременным животным никогда не следует давать противогрибковые препараты, поскольку они могут вызвать дефекты подстилки.

Пероральное лечение обычно должно продолжаться не менее шести недель. Ваша ветеринарная бригада возьмет посевы дерматофитоза через одну-две недели после начала лечения, чтобы определить, инфицирован ли ваш питомец. Обычно две последовательные отрицательные культуры указывают на то, что ваш питомец больше не инфицирован.

Санитарная обработка окружающей среды

Споры грибов могут попадать в окружающую среду и инфицировать других животных или людей в доме.Жилую среду вашего питомца необходимо часто дезинфицировать, пылесосить и мыть шваброй. Кровать и игрушки вашего питомца необходимо мыть. В местах, которые можно продезинфицировать, рекомендуется разбавленный раствор отбеливателя. Воздушные фильтры следует менять часто. Ваш ветеринар может порекомендовать ограничить вашего питомца местом, которое легко поддерживать в порядке.

Иммунопрофилактика дерматофитии у животных

1.

Стенвиг Х. Изоляция дерматофитов от домашних животных в Норвегии.Nord Vet Med. 1985; 37: 161–9.

PubMed CAS Google ученый

2.

Стенвиг Х. Передача дерматофитов от животных человеку. В: Берманн Б., Верстед А., редакторы. Лечение поверхностных грибковых инфекций. Осло, Норвегия: Агентство по медицинским изделиям, Упсала, Швеция, и Норвежское управление по контролю за лекарственными средствами; 1996. стр. 27–32.

Google ученый

3.

DeBoer DJ, Moriello KA.Дерматофитии. В: Грин К.Э., редакторы. Инфекционные болезни собак и кошек. 3-е изд. Сондерс, Миссури 63146, США; 2006. 550–65.

4.

Радостиц О.М., Гей CC, Blood DC, Hinchcliff KW, ред. Дерматомикозы. В кн .: Ветеринария. Учебник болезней крупного рогатого скота, овец, свиней, коз и лошадей. У. Б. Сондерс, Филадельфия, Пенсильвания, 2007; 10-е изд. 1476–8.

5.

Граппель С.Ф., Бишоп К.Т., Бланк Ф. Иммунология дерматофитов и дерматофитоз. Bacteriol Rev.1974; 38: 222–50.

PubMed CAS Google ученый

6.

Lepper AWD. Экспериментальная инфекция крупного рогатого скота Trichphyton verrucosum: предварительные клинические, иммунологические и гистологические наблюдения у первично инфицированного и повторно инокулированного крупного рогатого скота. Res Vet Sci. 1972; 13: 105–15.

CAS Google ученый

7.

Hussin Z, Smith JMB. Процедуры вакцинации и инфекционность дерматофитных поражений.Микопатология. 1983; 81: 71–6.

PubMed CAS Google ученый

8.

Кальдерон Р.А. Иммунорегуляция дерматофитий. Crit Rev Microbiol. 1989. 16: 339–68.

PubMed CAS Google ученый

9.

Woodfolk JA, Platts-Mills TAE. Иммунный ответ на дерматофиты. Res Immunol. 1998. 149: 436–45.

PubMed CAS Google ученый

10.

Smith JMB, Griffin JFT. Стратегии разработки вакцины против стригущего лишая. J Med Vet Mycol. 1995; 33: 87–91.

PubMed CAS Google ученый

11.

Кильштейн П., Рихтер В. Versuche zur Immunprophylaxe der Rindertrichophytie. [Иммунопрофилактика стригущего лишая крупного рогатого скота]. Arch Exper Veterinärmed. 1970; 24: 1205–18. (на немецком).

CAS Google ученый

12.

Третьяков А.Д., Саркисов А.Х., Петрович С.В., Никифоров Л.Я. Création de Troupeaux Immuns et éradication de la Trichophytose par la вакцинация против животных. [Установление коллективного иммунитета и искоренение трихофитии путем вакцинации животных]. Бюллетень МЭБ. 1980; 92: 797–803 (на французском языке).

Google ученый

13.

Саркисов АХ. Современные методы борьбы с дерматомикозами животных. Москва: Успехи сельскохозяйственных наук; 1987 г.181–97.

Google ученый

14.

Саркисов А.Х., Петрович С.В., Никифоров Л.И., Яблочник Л.М., Корольёва В.П. Иммунизация крупного рогатого скота против опоясывающего лишая. Ветеринария. 1971. 2: 54–6.

PubMed Google ученый

15.

Петрович С.В., Саркисов Ах. Специфическая профилактика стригущего лишая у лошадей (живая вакцина против T. equinum ). Ветеринария. 1981; 9: 40–2.

Google ученый

16.

Саркисов А.Х., Никифоров Л.И. Специфическая профилактика трихофитии пушных зверей. Ветеринария. 1981; 7: 37–8.

Google ученый

17.

Станкушев Х., Дупаринова М., Костов Г., Градинарский И. Сравнительные иммунологические исследования и определение эпизоотологической эффективности советской вакцины LTF-130 при трихофитии.Вет Мед Науки. 1979; 16: 67–73 (на болгарском языке).

PubMed Google ученый

18.

Хорват З., Гаал Т. A szarvas’murha-tarlosömör elleni LTF-130 (SZU) clöcsiras vakcina Kiprobalasi eredmenyeu. [Результаты испытания вакцины LTF-130 против стригущего лишая крупного рогатого скота]. Мадьяр Аллаторвосок Лапья. 1977; 32: 452–4 (на венгерском).

Google ученый

19.

Rotermund H, Franz H, Hausburg G.Erste Erfahrungen bei der Anwendung der sowjetischen Trichophytievakzine LTF-130. [Первые опыты применения советской вакцины LTF-130 против трихофитии]. Monatsh Veterinaermed. 1977; 32: 576–7 (на немецком языке).

Google ученый

20.

Крджалич П., Стойчевич С., Бресянац Д. Практические возможности за иммунопрофилаксу трихфисий правительства у индустриального узгоя. [Практический опыт иммунопрофилактики против трихофитии крупного рогатого скота].Ветер-Гласник. 1978; 32: 343–9 (на сербском).

Google ученый

21.

Аамодт О., Наесс Б., Сандвик О. Вакцинация норвежского крупного рогатого скота против стригущего лишая. Zentralblatt Veterinarmed B 1982; 29: 451–6.

CAS Google ученый

22.

Otcenásek M, Stros K, Komárek J, Tomsíková A, Rasková H, Hamácek F. Zkusenosti s Vakcinaci skotu proti trichfytoze pri preventci a tlumeni dermatofytickych zoonoz.[Вакцинация крупного рогатого скота против трихофитии в профилактике дерматофитных зоонозов и борьбе с ними]. Вет Мед (Прага). 1981; 26: 193–202 (на чешском языке).

Google ученый

23.

DeBoer DJ, Moriello KA. Гуморальные и клеточные иммунные ответы на Microsporum canis при естественном дерматофитозе кошек. J Med Vet Mycol. 1993; 31: 121–32.

PubMed CAS Google ученый

24.

Спаркс AH, Стокс CR, Gruffydd-Jones TJ. Гуморальные иммунные ответы у кошек с дерматофитиями. Am J Vet Res. 1993; 54: 1869–73.

PubMed CAS Google ученый

25.

Pier AC, Ellis JA, Mills KW. Развитие иммунного ответа на экспериментальную инфекцию крупного рогатого скота Trichophyton verrucosum . Vet Dermatol. 1993; 3: 131–8.

Google ученый

26.

Woodfolk JA. Аллергия и дерматофиты. Clin Microbiol Rev.2005; 18: 30–43.

PubMed CAS Google ученый

27.

Спаркс AH. Экспериментальная инфекция Microsporum canis у кошек: корреляция между иммунологическими и клиническими наблюдениями. J Med Vet Mycol. 1995; 33: 177–84.

PubMed CAS Google ученый

28.

Кальдерон Р.А., Хей Р.Дж.Клеточный иммунитет при экспериментальном дерматофитозе мышей. II. Адаптивная передача иммунитета к дерматофитной инфекции лимфоидными клетками от доноров с острыми или хроническими инфекциями. Иммунология. 1984; 53: 465–72.

PubMed CAS Google ученый

29.

Fong TAT, Mosmann TR. Роль IFN-γ в клонах Th2, опосредованных гиперчувствительностью замедленного типа. J Immunol. 1989; 143: 2887–93.

PubMed CAS Google ученый

30.

Кога Т., Ишизаки Н., Мацумото Т., Хори Ю. Высвобождение интерферона-γ in vitro мононуклеарными клетками периферической крови пациентов с дерматофитией в ответ на стимуляцию трихофитином. Br J Dermatol. 1993; 128: 703–4.

PubMed CAS Google ученый

31.

Кога Т., Ишизаки Х., Мацумото Т., Хори Ю. Уменьшение высвобождения интерферона-γ мононуклеарными клетками периферической крови пациентов с хроническим дерматофитозом в ответ на стимуляцию трихофитином.Acta Dermatol Venereol. 1995; 75: 81–2.

CAS Google ученый

32.

Lund A, Bratberg AM, Solbakk IT. Высвобождение интерферона-γ in vitro стимулированными трихофитином культурами цельных клеток крови от вакцинированных стригущим лишаем и контрольных телят, экспериментально инокулированных Trichpohyton verrucosum . Vet Dermatol. 2001; 12: 75–80.

PubMed CAS Google ученый

33.

DeBoer DJ, Moriello KA. Иммунный ответ на Microsporum canis , индуцированный вакциной против грибковой клеточной стенки. Vet Dermatol. 1994; 5: 47–55.

Google ученый

34.

DeBoer DJ, Moriello KA. Исследования вакцины убитых дерматофитных клеточных стенок против инфекции Microsporum canis на кошках. Res Vet Sci. 1995; 59: 110–3.

PubMed CAS Google ученый

35.

Elad D, Segal E. Иммуногенность у телят сырой рибосомальной фракции Trichophyton verrucosum : полевые испытания. Вакцина. 1995; 13: 83–7.

PubMed CAS Google ученый

36.

Элад Д., Сегал Э. Иммуногенность у морских свинок неочищенной рибосомной фракции из Microsporum canis . Вакцина. 1994; 12: 134–8.

PubMed CAS Google ученый

37.

Monod M, Capoccia S, Lechenne B, Saugg C, Holdom M, Jousson O. Секретируемые протеазы патогенных грибов. Int J Med Microbiol. 2002; 292: 405–19.

PubMed CAS Google ученый

38.

Jousson O, Lechenne B, Bontems O, Capoccia S, Mignon B, Barblan J, Quadroni M, Monod M. Размножение предкового гена, кодирующего секретируемый фунгализин, предшествовало дифференциации видов в дерматофитах Trichophyton и Microsporum .Microbiol. 2004; 150: 301–10.

CAS Google ученый

39.

Mignon B. Nouvelles recherches sur la caractérisation des facteurs de virulence de Microsporum canis . [Новые исследования по характеристике факторов вирулентности в Microsporum canis ]. Bull Mem Acad R Med Belg. 2005; 160: 270–5 (на французском).

PubMed Google ученый

40.

Brouta F, Descamps F, Monod M, Vermout S, Losson B, Mignon B. Гуморальный и клеточный иммунный ответ на рекомбинантную кератинолитическую метаоллопротеазу Microsporum canis (r-MEP3) экспериментально инфицированных морских свинок. Med Mycol. 2003. 41: 495–501.

PubMed CAS Google ученый

41.

Vermout SM, Brouta FD, Descamps FF, Losson BJ, Mignon BR. Оценка иммуногенности и защитной эффективности вакцины субъединицы металлопротеазы Microsporum canis у морских свинок.FEMS. 2004; 40: 75–80.

CAS Google ученый

42.

Descamps FF, Brouta F, Vermout SM, Willame C, Losson BJ, Mignon BR. Рекомбинантная кератиназа 31,5 кДа и неочищенный экзоантиген из Microsporum canis не защищают морских свинок от гомологичной экспериментальной инфекции. Vet Dermatol. 2003. 14: 305–12.

PubMed Google ученый

43.

Woodfolk JA, Sung SSJ, Benjamin DC, Lee AJK, Platts-Mills TAE.Различный репертуар Т-клеток человека опосредует гиперчувствительность немедленного и замедленного типа к антигену Trichophyton Tri r 2. J Immunol. 2000; 165: 4379–87.

PubMed CAS Google ученый

44.

Раска М., Рыбникар А., Чумела Дж., Белакова Дж., Вейгл Е. Рекомбинантные белковые и ДНК-вакцины, полученные из hsp60 Trichophyton mentagrophytes , контролируют клиническое течение трихофитоза у крупного рогатого скота и морских свинок.Микозы. 2004; 47: 407–17.

Google ученый

45.

Intervet, Обзор характеристик продукта Bovilis® Ringvac на http://www.vmd.gov.uk/espcsite/Documents/124263.DOC (получено 9 мая 2007 г.).

46.

Bioveta Inc., Обзор характеристик продукта для Trichoben на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=102, и Trichoben AV на http://www.bioveta.cz/product .asp? vyrobekid = 11 (получено 9 мая 2007 г.).

47.

Boehringer Ingelheim Vetmedica GmbH, Обзор характеристик продукта Insol® Trichophyton по адресу http://www.imb.ie/view_spc.asp?pa_number=10007%2F034%2F001 (получено 9 мая 2007 г.).

48.

Рыбникарж А. Перекрестный иммунитет у телят после вакцинации против трихофитии. Acta Vet Brno. 1992; 61: 189–94.

Google ученый

49.

Pier AC, Hodges AB, Lauze JM, Raisbeck M. Экспериментальный иммунитет к Microsporum canis и перекрестные реакции с другими дерматофитами, имеющими ветеринарное значение.J Med Vet Mycol. 1995; 33: 93–7.

PubMed CAS Google ученый

50.

Wawrzkiewicz K, Wawrzkiewicz J. Ранняя иммунизация телят инактивированной вакциной против трихофитии. Polskie Archivum Weterynaryjne. 1988. 28: 5–16.

Google ученый

51.

Wawrzkiewicz K, Wawrzkiewicz J. Инактивированная вакцина против стригущего лишая. Comp Immunol Microbiol Infect Dis.1992; 15: 31–40.

PubMed CAS Google ученый

52.

Bratberg AM, Solbakk IT, Gyllensvaan C, Bredahl LK, Lund A. Experimentelle Challenge-Studie zur Wirksamkeit einer inaktivierten und einertenuirten Rindertrichophytie-Vakzine. [Эффективность инактивированной и живой вакцины против стригущего лишая крупного рогатого скота в экспериментальном испытании с заражением]. Tierärztliche Umschau. 1999; 54: 519–20 (на немецком языке).

Google ученый

53.

Кочик Т. Оценка иммуногенных свойств живых и убитых вакцин против трихофитии морских свинок и телят. Pol Arch Weter. 1982; 23: 95–107 (на польском языке).

PubMed CAS Google ученый

54.

Хайдуч М., Драбек Дж., Рацлавский В., Котала В., Михалек Т., Зеленкова И. Разнообразие между диким типом и прививочными штаммами Trichophyton verrucosum исследовано с помощью случайного амплифицированного полиморфного анализа ДНК.Folia Biologica (Прага). 1999; 45: 151–6.

CAS Google ученый

55.

Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В. Тестирование защитных эффектов авирулентной вакцины против трихофитии крупного рогатого скота. Вет Мед (Прага). 1986; 31: 219–26 (на чешском языке).

Google ученый

56.

Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В., Крупка В. Иммунитет у крупного рогатого скота, вакцинированного против стригущего лишая. Микозы.1991; 34: 433–6.

PubMed Статья Google ученый

57.

Гуддинг Р., Нейсс Б. Вакцинация крупного рогатого скота против стригущего лишая, вызванного Trichophyton verrucosum . Am J Vet Res. 1986; 47: 2415–7.

PubMed CAS Google ученый

58.

Kielstein P, Wolf H, Graser Y, Buzina W., Blanz P. Zur Variabilität von Trichophyton verrucosum-Isolaten aus Impfbeständen mit Rindertrichophytie.[Об изменчивости изолятов Trichophyton verrucosum из вакцинированных стад стригущим лишаем крупного рогатого скота]. Микозы. 1998. 41 (Дополнение 2): 58–64 (на немецком языке).

PubMed Google ученый

59.

Гуддинг Р., Нэсс Б., Амодт О. Иммунизация против стригущего лишая крупного рогатого скота. Vet Rec. 1991; 128: 84–5.

PubMed CAS Google ученый

60.

Гордон П.Дж., Бонд Р.Эффективность живой аттенуированной вакцины Trichophyton verrucosum для борьбы с дерматофитиями крупного рогатого скота. Vet Rec. 1996. 139: 395–6.

PubMed CAS Google ученый

61.

Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Дж. Защитная эффективность вакцин против дерматофитоза крупного рогатого скота после двойной и однократной вакцинации. Микозы. 1997. 41: 83–6.

Google ученый

62.

Rybnikář A, Vrzal V, Chumela J. Минимальная эффективная доза вакцины против трихофитии телок. Вет Мед (Прага). 1991; 36: 593–7 (на чешском языке).

Google ученый

63.

Törnquist M, Bendixen PH, Pehrson B. Вакцинация против стригущего лишая телят при специализированном производстве говядины. Acta Vet Scand. 1985; 26: 21–9.

PubMed Google ученый

64.

Наесс Б., Сандвик О.Ранняя вакцинация телят против стригущего лишая, вызванного Trichophyton verrucosum . Vet Rec. 1981; 109: 199–200.

PubMed CAS Google ученый

65.

Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Й. Вакцинация молодых телят против трихфитоза. Acta Vet Brno. 1993; 62: 55–61.

Google ученый

66.

Bratberg AM, Solbakk IT, Lund A, Bredahl LK. Sicherheit und Wirksamkeit des Impfstoffes Permavax® – Tricho / N gegen bovine Trichophytie bei neugeborenen Kälbern.[Безопасность и эффективность вакцины Premavax ^® -Tricho / N против трихофитии у новорожденных телят]. Tierärztliche Umschau. 1998; 53: 686 (на немецком языке).

Google ученый

67.

Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В. Иммунизация стельных коров против стригущего лишая и ее влияние на потомство. Acta Vet Brno. 2001; 70: 421–3.

Google ученый

68.

Gudding R, Lund A.Иммунопрофилактика дерматофитии крупного рогатого скота. Кан Вет Дж. 1995; 36: 302–6.

PubMed CAS Google ученый

69.

Siesenop U, Böhm KH, Brandenbusemeyer E, Conrad P. Исследования роста, спорообразующей способности и вирулентности вакцинного штамма TV-M-310 вакцины Bioveta против стригущего лишая. Микозы. 1994; 37: 371–6.

PubMed CAS Google ученый

70.

Lund A, Bratberg AM, Evensen Ø. Рекрутирование клеток в коже в ходе экспериментального заражения Trichophyton verrucosum у вакцинированного и невакцинированного теленка. В: Kwochka KW, Willemse T, Tscharner Cv. Успехи ветеринарной дерматологии. Баттерворт-Хайнеманн; 1998; 3: 271–81.

71.

Панин А.Н., Маноян М.Г., Летягин К.П., Саркисов К.А. Профилактика и терапия трихофитии животных вакциной «ВЕРМЕТ» [аннотация]. Vet Dermatol. 2000; 11 (Дополнение 1): 40.

Google ученый

72.

Саркисов Ах. Специальная профилактика трихофитоза крупного рогатого скота. [Специфическая профилактика трихофитии молодняка КРС]. Бюллетень МЭБ. 1976; 85: 481–8 (на французском).

Google ученый

73.

Кильштейн П. Систематическая борьба с глубоким дерматофитозом крупного рогатого скота в бывшей ГДР. Микозы. 1990; 33: 575–9.

PubMed CAS Google ученый

74.

Rybnikář A, Vrzal V, Chumela J, Hejtmánek M, Weigl E. Вакцинация крупного рогатого скота против трихофитии с использованием чешских вакцин. J Mycol Méd. 1996; 6: 93–4.

Google ученый

75.

Spanoghe L, Kuiper JD, Brethouwer AH. Een onderzoek naar de werkzaamheid van het trichofytie-Vacin LTF 130 onder praktykomstandigheden. [Исследование эффективности вакцины против трихофитии LTF 130 в практических условиях]. Tijdschri Diergeneeskd.1985; 110: 1011–4 (на голландском).

CAS Google ученый

76.

Gyllensvaan C, Plym Forshell K, Törnquist M. Projekt Felfri hud — en lägesrapport. [Схема безошибочного скрытия — отчет о состоянии]. Sv Vet Tidn. 1992; 44: 423–4 (на шведском языке).

Google ученый

77.

Mackenzie DWR, Loeffler W., Mantovani A, Fujikura T. Руководство по диагностике, профилактике и борьбе с дерматофитозами у человека и животных.Женева: Всемирная организация здравоохранения; 1986.

Google ученый

78.

Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Дж. Вакцинация собак и телят против Microsporum canis . Acta Vet Brno. 1996; 65: 161–4.

Google ученый

79.

Pier AC, Zancanella PJ. Иммунизация лошадей против дерматофитии, вызванной Trichophyton equinum . Конная практика.1993; 15: 23–7.

Google ученый

80.

Wawrzkiewicz K, Ziolkowska G. Специфическая иммунопрофилактика при инфекции Microsporum canis у морских свинок. J Mycol Méd. 1996; 6: 56–62.

Google ученый

81.

DeBoer DJ, Moriello KA, Blum JL, Volk LM, Bredahl LK. Безопасность и иммунологические эффекты после инокуляции кошек инактивированной и комбинированной живо-инактивированной дерматофитической вакциной.Am J Vet Res. 2002; 63: 1532–7.

PubMed Google ученый

82.

Rybnikář A, Vrzal V, Chumela J, Petras J. Иммунизация кошек против Microsporum canis . Acta Vet Brno. 1997; 66: 177–81.

Google ученый

83.

Bioveta Inc., Краткое описание характеристик продукта Biofel M Plus на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=114, Biocan M Plus на http: // www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=142 и Trichoequen на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=103 (последнее посещение — 30 июня 2007 г.).

84.

Рыбникарж А., Чумела Дж., Врзал В., Лысак Дж., Петрас Дж. Вакцинация лошадей против трихофитии. Acta Vet Brno. 1991; 60: 165–9.

Артикул Google ученый

85.

Boehringer Ingelheim Vetmedica GmbH, Краткое описание характеристик продукта Insol ^® Dermatophyton на http: // www.boehringer-ingelheim.com/corporate/products/animal_health_horse_02.htm (получено 17 апреля 2007 г.).

86.

Karle J, Steller U, Fenner A. Kontrollierte Blindstudie zur Prüfung der Wirksamkeit des inaktivierten Impfstoffes Insol ^® Dermatophyton bei künstlich infizierten Pferden. [Контролируемое слепое исследование для доказательства эффективности инактивированной вакцины Insol ^® Dermatophyton у искусственно инфицированных лошадей]. Pferdeheilkunde. 2002; 18: 625–8 (на немецком языке).

Google ученый

87.

Fenner A, Karle J. Therapeutische Impfung gegen Dermatophytosen beim Pferd mit Insol® Dermatophyton. [Терапевтическая вакцинация против дерматофитоза лошадей с помощью Insol® Dermatophyton]. Praktischer Tierarzt. 81: 7, 574–8 (на немецком языке).

88.

Декамп Ф., Брута Ф., Лоссон Б., Миньон Б. Перспективы антидерматофитной вакцинации для домашних плотоядных животных. Ann Med Vet. 2001; 145: 178–82 (на французском).

Google ученый

89.

Ветеринарный компендиум Швейцарии, Insol® Dermatophyton, http://www-vetpharm.uzh.ch/TAK/00000000/00001500.VAK (получено 20 апреля 2007 г.).

90.

DeBoer DJ, Carlotti DN. Отчет о семинаре по противогрибковой терапии. В: Хиллер А., Фостер А.П., Квочка К., редакторы. Достижения ветеринарной дерматологии, том 5. Oxford: Blackwell; 2005. с. 306–11.

Google ученый

91.

Hagen KW, Горхэм-младший. Дерматомикозы у пушных зверей: шиншиллы, хорька, норки и кролика. Vet Med Small Anim Clin. 1972; 67: 43–8.

PubMed CAS Google ученый

92.

Бем К. Х., Лолигер К. Die Verbreitung von Dermatophyten bei Pelztieren (Nerz und Chinchilla). [Распространение дерматофитов у пушных зверей (норка и шиншилла)]. Zentralbl Veterinarmed B. 1969; 16: 775–83 (на немецком языке).

PubMed Google ученый

93.

Яновиц Е.Б., Лонг Г.Г. Дерматомикоз ранчо-лисиц. J Am Vet Med Assoc. 1984; 185: 1393–4.

PubMed CAS Google ученый

94.

Торрес-Родригес Дж. М., Дронда М. А., Розелл Дж., Мадренис Н. Заболеваемость дерматофитозом на кроличьих фермах в Каталонии, Испания, и его последствия для здоровья человека. Eur J Epidemiol. 1992; 8: 326–9.

PubMed CAS Google ученый

95.

Саркисов АХ, Никифоров Л.И. Специфическая профилактика инфекции Trichophyton у дежурных животных (чернобурка и песец). Бык ВИЕВ. 1981; 42: 32–4.

Google ученый

96.

Bioveta Inc., Краткое изложение характеристик продукта Trichopelen на http://www.bioveta.cz/product.asp?vyrobekid=43 (получено 25 июня 2007 г.).

97.

Никифоров Л.И., Чучина Г.В. Динамика видов дерматофитов среди кормовых животных и кроликов.Ветеринария. 1989; 1: 38.

Google ученый

98.

Englund L, Mattson R, Berndtson LT. Возможный эффект вакцинации против инфекции Trichophyton mentagrophytes на шведской лисьей ферме. Acta Vet Scand. 1990; 31: 121–3.

Google ученый

99.

Rybnikář A, Chumela J, Vrzal V, Nepeřený J. Вакцинация кроликов против трихофитии — экспериментальное исследование.Acta Vet Brno. 1998. 67: 121–5.

Google ученый

100.

Рыбникарж А., Чумела Й., Врзал В. Стригущий лишай у пушных зверей. Veterinářstvi. 1993; 43: 390–1 (на чешском языке).

Google ученый

101.

Рыбникарж А., Врзал В., Чумела Я., Коварж С. Стригущий лишай в большой колонии кроликов. Veterinářstvi. 1995; 45: 120–1 (на чешском языке).

Google ученый

102.

Костро К. Иммуногенность Trichophyton mentagrophytes , выделенных от песцов с стригущим лишаем. Pol J Vet Sci. 2004; 7: 15–20.

PubMed CAS Google ученый

103.

Бредаль Л.К., Братберг А.М., Солбакк ИТ, Лунд А. Эффективность экспериментальной вакцины Microsporum canis на выращиваемых лисицах. Vet Dermatol. 2000; 11 (приложение 1): 39 (Научные тезисы, 4-й Всемирный конгресс ветеринарной дерматологии, Сан-Франциско).

Google ученый

104.

Бредаль Л.К., Братберг А.М., Солбакк ИТ, Лунд А. Безопасность экспериментальной вакцины Microsporum canis для выращиваемых лисиц. Vet Dermatol. 2000; 11 (приложение 1): 45 (Научные тезисы, 4-й Всемирный конгресс ветеринарной дерматологии, Сан-Франциско).

Google ученый

105.

Сималякова М., Бухвальд Дж., Олексова Б. Microsporum canis -Infektion beim Kaninchen mit Ubertragung auf den Menschen.[ Инфекция Microsporum canis у кроликов и ее передача человеку]. Микозы. 1989; 32: 93–6 (на немецком языке).

PubMed CAS Google ученый

106.

Wabacha JK, Gitau GK, Bebora LC, Bwanga CO, Wamuri ZM, Mbithi PMF. Возникновение дерматомикоза (стригущего лишая), вызванного Trichophyton verrucosum , у молочных телят и его распространение среди обслуживающего персонала. J S Afr Vet Ass. 1998; 69: 172–3.

CAS Google ученый

107.

Ming PX, Xia YL, Bulmer GS. Вспышка Trichophyton verrucosum в Китае, переданная от коров человеку. Микопатология. 2006; 161: 225–8.

PubMed Google ученый

108.

Лундер М., Лундер Б. Может ли инфекция Microsporum canis стать серьезной дерматологической проблемой? Дерматология. 1992; 184: 87–9.

PubMed CAS Статья Google ученый

109.

Али Р., Бергер Т. Распространенные поверхностные грибковые инфекции у больных СПИДом. Clin Infect Dis. 1996; 22 (Приложение 2): S128–32.

PubMed Google ученый

110.

Bournerias I, De Chauvin MF, Datry A, Chambrette I, Carriere J, Devidas A, Blanc F. Необычные Microsporum canis инфекции у взрослых пациентов с ВИЧ. J Am Acad Dermatol. 1996; 35: 808–10.

PubMed CAS Google ученый

111.

Porro AM, Yoshioka MC, Kaminski SK, Palmeira Mdo C, Fischman O, Alchorne MM. Диссеминированный дерматофитоз, вызванный Microsporum gypseum , у двух пациентов с синдромом приобретенного иммунодефицита. Микопатология. 1997; 137: 9–12.

PubMed CAS Google ученый

112.

Сандвен П. Эпидемиология дерматофитных инфекций. В: Берманн Б., Верстед А., редакторы. Лечение поверхностных грибковых инфекций. Норвегия, Упсала и Осло: Агентство медицинских продуктов, Швеция и Норвежское управление по контролю за лекарственными средствами; 1996 г.п. 27–32.

Google ученый

113.

Seebacher C. Epidemiologie, Klinik und Therapie von Dermatomykosen durch zoophile Dermatophyten. [Эпидемиология, клиника и лечение дерматомикозов, вызванных зоофильными дерматофитами]. Микозы. 2000; 43 (Дополнение 1): 4–7 (на немецком языке).

PubMed Google ученый

114.

Мориелло К.А. Обзор зоонозных кожных заболеваний собак и кошек.Animal Res Rev.2004; 4: 157–68.

Google ученый

115.

Bildfell RJ, Hedstrom OR, Dearing PL. Вспышка дерматофитии у выращиваемых норок в США. Vet Rec. 2004. 155: 746–8.

PubMed CAS Google ученый

116.

Haab C, Bertschinger HU, Rotz Av. Epidemiologie der Trichophytie beim Mastkalb im Hinblick auf die Verhütung von Lederschäden. [Эпидемиология стригущего лишая телят с точки зрения профилактики дефектов кожи].Schweizer Archiv für Tierheilkunde. 1994; 136: 217–26 (на немецком языке).

PubMed CAS Google ученый

117.

Coles GC. Как улучшить качество шкуры и шкуры. J Soc Leather Technol Chem. 1996; 80: 39–40.

Google ученый

118.

Аноним. Новая вакцина против стригущего лишая. Кожа 1993; 195: 16.

119.

Bredahl L, Carlsson J, Gyllensvaan C. Ringorm hos nötkreatur – klinik, bekämpande och betydelse.Стригущий лишай крупного рогатого скота — клиника, контроль и значение. Sv Vet Tidn. 1998; 50: 413–8 (на шведском языке).

Google ученый

120.

Гуддинг Р. Анализ затрат и результатов вакцинации против стригущего лишая крупного рогатого скота. Acta Vet Scand. 1996; 90 (Приложение 1): 67–8.

CAS Google ученый

Вирусы и грибок у кошек — что важно?

Вирусные и грибковые инфекции (кожный грибок дерматомикоз) — обычная проблема в семьях с несколькими кошками и в приютах для животных.

Вирусные инфекции

Так называемый кошачий грипп является особенно распространенным (кошачий калицивирус = FCV; кошачий вирус герпеса = FHV) и может даже возникать у вакцинированных кошек в меньшей, но иногда хронической форме. Кошачий грипп обычно не опасен для жизни. Это не относится к FIV (кошачий СПИД), FELV (вирус лейкемии кошек), FIP (инфекционный перитонит кошек) или парвовирусу (кошачья чума). Эти вирусы неизлечимы даже при интенсивном лечении и, к сожалению, часто смертельны.

Обычные инъекции защищают от кошачьей чумы (парвовируса), кроме того, существует вакцинация от FELV.FIP — это не инфекция в строгом смысле этого слова, а скорее мутация нормального кишечного вируса (коронавируса). Пока не известно, как и почему эта мутация возникает у некоторых кошек.

Симптомы, вызываемые вирусом, зависят от иммунной системы кошки. Иммунная система может держать под контролем определенные вирусы в течение длительного времени, поэтому симптомы не проявляются, даже если кошка инфицирована. В таком случае это называется скрытой или стойкой инфекцией. Есть надежные тесты на FIV и FELV.Однако так называемые тесты FIP все еще ненадежны.

Кожный грибок — дерматомикоз

Грибковые инфекции — это многофакторное заболевание: споры грибов повсюду, и болезнь возникает только тогда, когда иммунная система кошки ослаблена. Вот почему очень молодые кошки, кошки с FIV или кошки, находящиеся в стрессе (приюты для животных), особенно часто поражаются грибковыми заболеваниями. Таким образом, курс лечения всегда будет включать в себя укрепление иммунной системы больного.

Что вы можете сделать, чтобы защитить свою кошку

Профилактические инъекции следует делать в зависимости от риска инфицирования.Правильная и продолжительная базовая иммунизация особенно важна для вашей кошки. Спросите у ветеринара, что было бы разумно и необходимо вашей кошке, и всегда обращайтесь за советом. В случае грибковых инфекций необходимо сначала установить точный тип инфекции, а затем лечить в течение длительного периода. Помните, что вы также можете получить грибок кожи.

Вы можете укрепить иммунную систему своей кошки, дав ей хороший, простой, благоприятный для кошек рацион, а также сбалансированное сочетание микроэлементов, которое можно подавать с лакомствами, красивыми закусками и / или пастой.Бета-глюканы, наряду со специфическими антиоксидантами и витаминами, особенно положительно влияют на иммунную систему вашей кошки.

No related posts.